Обеззараживание помещений и оборудования лабораторий

Под микробным обеззараживанием понимается комплекс мероприятий, средств и методов, обеспечивающих снижение воздушного и поверхностного загрязнения рабочих помещений до требуемых уровней. Это понятие более широкое, чем понятие дезинфекция, которая служит лишь одним из элементов микробного обеззараживания.

Для обеззараживания различных объектов имеется большой выбор дезинфицирующих средств, а также комбинаций дезинфектантов и детергентов с приемлемой бактерицидной активностью и незначительным коррозионным действием. Однако средства и методы обеззараживания определяются в каждом конкретном случае в зависимости от вида ПБА и характера обрабатываемого объекта (СП 1.3.1285-03).

Например, при работе с вегетативными формами бактерий I – II групп патогенности обеззараживание поверхностей (стол, оборудование, стены, двери) в помещениях «заразной» зоны лаборатории проводят 1 % раствором хлорамина Б, 3 % раствором перекиси водорода (время экспозиции 60 мин), 0,2 % раствором ДП-2 (экспозиция 30 мин) или другим дезинфицирующим средством, обладающим бактерицидной активностью в отношении указанных агентов.

Режим обеззараживания аналогичных объектов в лаборатории, проводящей исследование со спорообразующими бактериями, отличается. В этом случае стол, стены, двери, оборудование др. протирают двукратно с интервалом 30 мин 6 % раствором перекиси водорода с 0,5 % моющего средства (экспозиция 120 мин) или двукратно с интервалом 30 мин орошают 1 % активированным раствором хлорамина Б (экспозиция 120 мин), используя гидропульт, автомакс или распылитель типа «Квазар» (рис. 1).

Каждая серия поступающего в лабораторию дезинфицирующего средства должна проверятся на бактерицидную активность и процентное содержание активного вещества. Так, содержание активного хлора (АХ) в хлорамине Б должно быть не менее 24 %. Перекись водорода медицинская может быть использована с содержанием перекиси водорода не менее 30 %.

Дезинфицирующие растворы для лабораторного использования готовит лаборант или дезинфектор под руководством врача или научного сотрудника в специально оборудованном помещении, надев халат, очки, маску, резиновые перчатки. Сроки использования готовых (рабочих) дезинфицирующих растворов регламентированы нормативными документами. Например, рабочий раствор велтолена, хлорамина необходимо менять на свежеприготовленный каждый день.

В лаборатории хранят не менее чем недельный запас дезсредств. Следует отметить, что запрещено одновременное использование 6 % раствора перекиси водорода и 3 % раствора хлорамина в пределах лаборатории в связи с взрывоподобным характером протекания химической реакции при смешивании этих растворов.

Спецобработка помещений, оборудования и различных объектов лаборатории подразделяется на ежедневную (текущую) и периодическую (генеральную). В случае возникновения аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность попадания ПБА в воздух или на поверхность оборудования лаборатории, обеззараживание проводится незамедлительно.

Текущую дезинфекцию рабочих поверхностей в микробиологических комнатах (боксах) проводит лаборант под контролем врача, используя соответствующий виду ПБА дезинфектант и режим обработки. После необходимой экспозиции младший персонал под наблюдением лаборантов делает влажную уборку помещения.

Каждую рабочую зону лаборатории обеспечивают индивидуальным промаркированным набором уборочного инвентаря, который не разрешается использовать для уборки других помещений. После каждой уборки ветошь обрабатывают дезраствором, прополаскивают в воде и просушивают. Емкости также подвергают обработке.

Еженедельно в помещениях «заразной» зоны проводят генеральную уборку, используя дезинфицирующие средства. Протирают стены на высоту до 2 м, мебель, приборы, аппараты и др. Термостаты и холодильники (после очищения от наледи) один раз в месяц подвергают дезинфекционной обработке.

После влажной уборки проводят обеззараживание воздуха и поверхностей помещениях «заразной» зоны ультрафиолетовыми лучами (УФ).

Бактерицидным действием обладает ультрафиолетовое излучение с диапазоном длин волн 205-315 нм, которое проявляется в деструктивно-модифицирующих фотохимических повреждениях ДНК клеточного ядра микроорганизма, что приводит к гибели микробной клетки в первом или последующем поколении. Однако следует учитывать, что УФ-излучение оказывает на микроорганизмы не только бактерицидное, но и мутагенное действие, приводя к появлению резистентных к данному фактору форм.

Более чувствительны к воздействию ультрафиолетового излучения бактерии в вегетативной форме и вирусы. Менее чувствительны грибы и простейшие микроорганизмы. Наибольшей устойчивостью обладают споровые формы бактерий.

Бактерицидные лампы вмонтированы в бактерицидные облучатели, которые подразделяются на открытые (потолочные, напольные или настенные), комбинированные (настенные) и закрытые. Открытые и комбинированные облучатели предназначены для обеззараживания помещения только в отсутствии людей или при кратковременном их пребывании в помещении в защитных очках со светофильтрами. Бактерицидные облучатели устанавливают в соответствии с нормативными документами по их установке и эксплуатации.

Время УФ-облучения зависит от профиля лаборатории, габаритов помещения, типа бактерицидной установки, объекта обеззараживания (воздух, поверхность) и других показателей.

На каждый бактерицидный облучатель заводят журнал регистрации и контроля эксплуатации лампы. В журнале фиксируются время их горения и бактерицидная эффективность облучения.

При оценке бактерицидной эффективности ультрафиолетового облучения воздушной среды помещения или поверхностей в качестве санитарно-показательного микроорганизма принимается Staphylococcus aureus. Для контроля обсемененности воздуха в помещениях бактериологических и вирусологических лабораториях может быть использован седиментационный метод. В соответствии с этим методом на рабочий стол ставят две чашки Петри с 2 % питательным агаром и открывают их на 15-20 минут. Посевы инкубируют при температуре 37 °С в течение 48 часов. При росте не более 4 колоний S. aureus на чашке, уровень микробной обсемененности воздуха считается допустимым.

Бактерицидные лампы, отработавшие гарантийный срок службы, указанный в паспорте, должны заменяться на новые. Для определения окончания срока службы могут быть использованы электрические счетчики, суммирующие общую наработку ламп в часах, или замеры радиометров, свидетельствующие о падении бактерицидного потока ниже номинального. Периодически (не реже одного раза в неделю) лампы следует очищать от пыли ветошью, смоченной спиртом.

При экстремальных ситуациях для обеззараживания воздуха и поверхностей в боксированных комнатах «заразной» зоны лаборатории применяют аэрозольную дезинфекцию при условии герметизации помещения и отключении приточно-вытяжной вентиляции.

Аэрозоли представляют собой гетерогенные аэродисперсные системы с размерами частиц жидкой дисперсной фазы от 0,1 до 1 000 мкм. Для аэрозольной дезинфекции выбирают системы с диаметром частиц 5 -25 мкм. Распыление дезинфектанта проводят с помощью пневматической (ПВАН) или тубулирующей (ТАН) аэрозольных насадок. Источником сжатого воздуха для распыления служит компрессор производительностью не менее 300 м³/ч при рабочем давлении 3-4 атм или аэрозольный генератор. Можно пользоваться аппаратами типа «Квазар».

При аэрозольной дезинфекции наиболее приемлемы жидкие химические препараты (формальдегид, перекись водорода медицинская, велтолен и др.). Концентрация дезинфектанта и режим обеззараживания зависит от вида ПБА, с которым велась работа в лаборатории.

Во время обеззараживания аэрозоль заполняет обрабатываемое помещение, оседает мельчайшими каплями на поверхностях стен, пола, оборудования и воздействует на обсеменяющие их микроорганизмы. Частично аэрозольные капли испаряются и в виде пара проникают в трудно доступные места.

При работе с формальдегидом после необходимой дезинфекционной экспозиции следует провести его нейтрализацию раствором аммиака.

Персонал, проводящий обработку, должен иметь кроме халата средства защиты органов дыхания, глаз и кожи.