Заглавная страница Избранные статьи Случайная статья Познавательные статьи Новые добавления Обратная связь FAQ Написать работу КАТЕГОРИИ: АрхеологияБиология Генетика География Информатика История Логика Маркетинг Математика Менеджмент Механика Педагогика Религия Социология Технологии Физика Философия Финансы Химия Экология ТОП 10 на сайте Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрацииТехника нижней прямой подачи мяча. Франко-прусская война (причины и последствия) Организация работы процедурного кабинета Смысловое и механическое запоминание, их место и роль в усвоении знаний Коммуникативные барьеры и пути их преодоления Обработка изделий медицинского назначения многократного применения Образцы текста публицистического стиля Четыре типа изменения баланса Задачи с ответами для Всероссийской олимпиады по праву Мы поможем в написании ваших работ! ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?
Влияние общества на человека
Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации Практические работы по географии для 6 класса Организация работы процедурного кабинета Изменения в неживой природе осенью Уборка процедурного кабинета Сольфеджио. Все правила по сольфеджио Балочные системы. Определение реакций опор и моментов защемления |
Молекулярно-генетические методыСодержание книги
Поиск на нашем сайте
Основу молекулярно-генетических методов составляет ПЦР и ее модификации. Принцип ПЦР заключается в многократном повторении (амплификации) исследуемых локусов нуклеиновых кислот термостабильной полимеразой для наработки достаточного количества ДНК и обнаружения ее методами электрофореза и гибридизации. Этот процесс достигается с помощью введения в реакционную смесь коротких молекул ДНК (праймеров), комплементарных нуклеотидным последовательностям того микроорганизма, который необходимо обнаружить. Связывание праймеров с соответствующими участками ДНК/РНК приводит к образованию локальной двухцепочечной структуры узнаваемой полимеразой, которая начинает достраивать ее в направлении 5- 3’, используя дезоксинуклеозидтрифосфаты, присутствующие в реакционной смеси. Таким образом, если один из праймеров связывается с прямой цепью, а другой с обратной, происходит наработка продукта, ограниченного с двух сторон этими праймерами. Поскольку каждый из вновь образованных продуктов - матрица для дальнейшей амплификации, происходит экспоненциальное увеличение их количества. Анализ полученных продуктов амплификации с помощью электрофореза заключается в разделении ампликонов под действием электрического поля в агарозном или полиакриламидном геле. После окончания электрофореза оценивается наличие и размер полученных продуктов реакции амплификации. Гибридизация заключается в нанесении на твердую фазу (микропланшет) олигонуклеотидных зондов, комплементарных внутренней структуре исследуемых ампликонов (прямая гибридизация), или нанесении на твердую фазу полученных ампликонов (обратная гибридизация). Добавление ампликонов или зондов, меченных либо с помощью радиоактивных меток, либо флюоресцентных, либо конъюгированных с ферментом, способным осуществлять цветовую реакцию (например, пероксидаза хрена), приводит к образованию комплексов, которые можно определять с помощью соответствующих методов. Достоинство гибридизации по сравнению с гель-электрофорезом - увеличение специфичности метода и объективизация оценки результатов эксперимента в автоматическом режиме. К недостаткам относится трудоемкость, необходимость использования специальной аппаратуры и более высокая стоимость.
Существуют наборы ПЦР для выявления отдельных микроорганизмов (L. pneumophila, C. pneumoniae, M. pneumoniae, S. pneumoniae, M. tuberculosis, M. a vium, M. kansasii, H. capsulatum, B. dermatidis, C. immitis, A. fumigatus, P. jiroveci, T. gondii, респираторных вирусов, ВПГ, ЦМВ, ТОРС-коронавируса) и одновременного выявления нескольких возбудителей. Наиболее перспективна - мультиплексная ПЦР в реальном времени, позволяющая определять наличие ДНК различных возбудителей в одной пробирке в течение менее 3 ч. Принцип основан на непосредственном иммунофлюоресцентном определении амплифицированных генов по мере их генерации in vitro. Эффективность подобного подхода была доказана в ряде исследований [52]. Однако требуется осторожность в интерпретации результатов для дифференциации между колонизацией (или латентными формами) и инфекцией. Пневмококки, хламидии, микоплазмы, кандиды, пневмоцисты встречаются у индивидуумов и в отсутствие инфекции. Герпес-вирусы, токсоплазмы, пневмоцисты могут существовать в латентной стадии в тканях и не вызывать инфекцию. Некоторые организмы трудно или невозможно выявить другими методами и молекулярная диагностика становится единственно возможной. Диагностическая специфичность и чувствительность могут достигать 98 - 100%. type: dkli00064 ЗАКЛЮЧЕНИЕ Лаборатории клинической микробиологии играют жизненно важную роль в этиологической диагностике ИНДП. Надежность результатов микробиологического исследования зависит от целого ряда условий: --- правильного получения адекватного материала; --- своевременной его доставки в лабораторию в соответствующих средах или контейнерах; --- преданалитической обработки образцов в соответствии с задачами исследования; --- чувствительности и специфичности используемых методов для выявления возбудителя и его маркеров; --- грамотной трактовки результатов исследования в соответствии с клиническими, радиографическими и другими лабораторными данными пациента. 9 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 1.Ansorg R., van der Boom R., Rath P.M. Detection of Aspergillus galactamannan antigen in foods and antibiotics // Mycoses. - 1997. - Vol. 40. - P. 353 - 357. 2.Boersma W.G., Lowenberg A., Lolloway Y. Pneumococcal capsular antigen detection and pneumococcal serology in patients with community-acquired pneumonia // Thorax. - 1991. - Vol. 46. - P. 902 - 906. 3.Bradsher R.W., Chapman S.W., Pappas P.G. Blastomycosis // Infect. Dis. Clin. N. Am. - 2003. - Vol. 17. - P. 21 - 40.
4.Capeding M.R.Z., Nohynek H., Ruutu P. Evaluation of a new tube latex agglutination test for detection of type-specific pneumococcal antigens in urine // J. Clin. Microbiol. - 1991. - Vol. 29. - P. 1818 - 1821. 5.Cook D.J., Fitzgerald J.M., Guyatt G.H., Walter S. Evaluation of the protected brush catheter and bronchoalveolar lavage in the diagnosis of nosocomial pneumonia // J. Intens. Care Med. - 1991. - Vol. 6. - P. 196 - 205. 6.Crawford S.W., Bowden R.A., Hackman R.C. Rapid detection of cytomegalovirus pulmonary infection by bronchoalveolar lavage and centrifugation culture // Ann. Intern. Med. - 1988. - Vol. 108. - P. 180 - 185. 7.Cregan P., Yamamoto A., Lum A., e.a. Comparison of four methods for rapid detection of Pneumocystis carinii in respiratory specimens // J. Clin. Microbiol. - 1990. - Vol. 28. - P. 2432 - 2436. 8.Duperval R., Hermans P.E., Brever N.S., et.al. Cryptococcosis, with emphasis on the significance of isolation of Cryptococcus neoformans from the respiratory tract // Chest. - 1977. - Vol. 72. - P. 13 - 19. 9.Fishman J.A., Roth R.S., Zanzot E.М. Use of induced sputum specimens for microbiological diagnosis of infections due to organisms other than Pneumocystis carinii // J. Clin. Microbiol. - 1994. - Vol. 32. - P. 131 - 134. 10.Freidig E.E., Smith T.F., Wilson W.R. Failuer to recover Chlamydia trachomatis from open lung biopsy tissue of adult immunosuppressed patients // Chest. - 1984. - Vol. 86. - P. 649. 11.Gay G.D., Smith T.F., Ilstrup D.M. Comparison of processing techniques for detection of Pneumocystis carinii cystis in open lung biopsy specimens // J. Clin. Microbiol. - 1985. - Vol. 21. - P. 150 - 151. 12.Grayston J.T. Chlamydia pneumoniae, strain TWAR // Chest. - 1989. - Vol. 95. - P. 664 - 669. 13.Hammerman K.J., Powell K.E., Hristianson P.S., et al. Pulmonary cryptococcosis. Clinical forms and treatment // Am. Rev. Respir. Dis. - 1973. - Vol. 108. - P. 1116 - 1123. 14.Herbrecht R., Natarajan-Ame S., Letscher-Bru V., et al. Invasiv pulmonary aspergillosis // Semin. Respir. Crir Care Med. - 2004. - Vol. 25. - P. 191 - 202. 15.Holmberg H., Holme T., Krook A. Detection of C polysaccharide in Streptococcus pneumoniae in the sputa of pneumonia patients by an enzyme-linked immunosorbent assay // J. Clin. Microbiol. - 1985. - Vol. 22. - P. 111 - 115. 16.Holmberg H, Krook A. Comparison of enzyme-linked immunosorbent assay with coagglutination and latex agglutination for rapid diagnosis of pneumococcal pneumonia by detecting antigen in sputa // Eur. J. Clin. Microbiol. - 1986. - Vol. 5. - P. 282 - 286. 17.Jimenez P., Salidias F., Meneses M. Diangostic fiberoptic bronchoscopy in patients with community-acquired pneumonia. Comparison between bronchoalveolar lavage and telescoping plugged catheter cultures // Chest. - 1993. - Vol. 103. - P. 1023 - 1027. 18.Johanson W.G., Pierce A.K., Sanford J.P., et al. Nosocomial respiratory infections with gram-negative bacilli. The significans of colonization of the respiratory tract // Ann. Intern. Med. - 1972. - Vol. 77. - P. 701 - 706. 19.Jules - Elysee K.M., Stover D.E., Zaman M.B. Aerosolized pentamadine: effect on diagnosis and presentation of Pneumocystis carinii pneumonia // Ann. Intern. Med. - 1990. - Vol. 112. - P. 750 - 787. 20.Kahn F.W., Jones J.M. Analysis of bronchoalveolar lavage specimens from immunocompromised patients with a protocol applicable to the microbiology laboratory // J. Clin. Microbiol. - 1988. - Vol. 26. - P. 1150 - 1155. 21.Kim T.C., Blackman R.S., Heatwole K.M., et al. Acid-fast bacilli in sputum smears of patients with pulmonary tuberculosis. Prevalence and significance of negative smears pretreatment and positive smear post-treatment // Am. Rev. Respir. Dis. - 1984. - Vol. 129. - P. 264 - 268. 22.Krick J.A., Remington J.S. Opportunistic invasive fungal infections in patients with leujaemia and lymphoma // Clin. Haematol. - 1976. - Vol. 5. - P. 249 - 310. 23.Leroy O., Santre C., Beuscart C. A five-year study of severe community-acquired pneumonia with emphasis on prognosis in patients admitted to an intensive care unit // Intensive Care Med. - 1995. - Vol. 21. - P. 24 - 31. 24.Malsh T.J., Merz W.G., Lee J.W., et al. Diagnosis of invasive fungal infections. Advances in nonculture systems // Curr. Clin. Top. Infect. Dis. - 1998. - Vol. 18. - P. 101 - 153. 25.Mandell L.A., Bartlett J.G., Dowell S.F., e.a. Update of Practice Guidelines for the Management of Community-Acquired Pneumonia in Immunocompetent Adults // Clin. Infect. Dis. - 2003. - Vol. 37. - P. 1405 - 1433. 26.Masur H., Rosen P.P., Armstrong D. Pulmonary disease caused by Candida species // Am. J. Med. - 1977. - Vol. 63. - P. 914 - 925. 27.Mathers G. Bacteriology of the urine in lobar pneumonia // J. Infect. Dis. - 1916. - Vol. 19. - P. 416 - 418. 28.Mayer J. Laboratory diagnosis of nosocomial pneumonia // Semin. Respir, Infect. - 2000. - Vol. 15. - P. 119 - 131. 29.Meduri G.U., Chastre J. The standardization of bronchoscopic techniques for ventilator-associated pneumonia // Chest. - 1992. - Vol. 102. - P. 557 - 564. 30.Metersky M.L., Bratzler D.W., Houck P.M. Predicting bacteremia in patients with community-acquired pneumonia // Am. J. Respir. Crit care Med. - 2004. - Vol. 169. - P. 342 - 347. 31.Murdoch D.R. Diagnosis of Legionella infection // Clin. Infect. Dis. - 2003. - Vol. 36. - P. 64 - 69. 32.Musher D.M., Monotoya R., Wanahita A. Diagnostic value of microscopic examination of Gram-stained sputum and sputum cultures in patients with bacteremic pneumococcal pneumonia // Clin. Infect. Dis. - 2004. - Vol. 39. - P. 165 - 169. 33.Noone P., Rogers B.T. Pneumonia caused by coliforms and Pseudomonas aeruginosa // J. Clin. Pathol. - 1976. - Vol. 29. - P. 652 - 656. 34.Ortqvist A., Kalin M., Lejdeborn L., Lundberg B. Diagnostic fiberoptic bronchoscopy and protected brush culture in patients with community-acquired pneumonia // Chest. - 1990. - Vol. 97. - P. 576 - 582.
35.Paya C.V., Roberts D.G., Cockerill F.R. Laboratory diagnosis of disseminated histoplasmosis. Clinical importance of the lysis-centrifugation blood culture technique // Mayo Clin. Proc. - 1987. - Vol. 62. - P.480 - 485. 36.Pisani R.J., Wright A.J. Clinical utility of bronchoalveolar lavage in immunocompromised hosts // Mayo Clin. Proc. - 1992. - Vol. 67. - P. 221 - 227. 37.Plouffe J.F., McNally C., File T.M.Jr. Value of noninvasive studies in community-acquired pneumonia // Infect. Dis. Clin. North Am. - 1998. - Vol. 12. - P. 689 - 699. 38.Rein M.F., Gwaltney J.M., O’Brien W.M., et al. Accuracy of Gram’s stain in identifying pneumococci in sputum // JAMA. - 1978. - Vol. 239. - P. 2671 - 2673. 39.Reingold A.L., Thomason B.M., Brake B.J., e.a. Legionella pneumonia in the United States: the distribution of serogroups an species causing human illness // J. Infect. Dis. - 1984. - Vol. 149. - P. 819. 40.Roberts G.D., Goodman N.L., Heifets L., et al. Evaluation of the BACTEC radiometric method for recovery of mycobacteria and drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis from acid-fast smear-positive specimens // J. Clin. Microbiol. - 1983. - Vol. 18. - P. 689 - 696. 41.Strimlan C.V., Dines D.E., Rodgers-Sulivan R.F., et al. Respiratoty tract Aspergillus. Clinical significans // Mim. Med. - 1980. - Vol. 63. - P. 25-29. 42.Thornley P.E., Aitken J., Drennan C.J., et al. Branchamella catarrhalis infection of the lower respiratory tract: Reliable diagnosis by sputum examination // Br. Mrd. J. - 1982. - Vol. 285. - P. 1537 - 1538. 43.Thorpe J.E., Baughman R.P., Frame P.T. Bronchoalveolar lavage for diagnosing acute bacterial pneumonia // J. Infect. Dis. - 1987. - Vol. 155. - P. 855-861. 44.Thorsteinsson S., Musher D.M., Fagan T. The diagnostic value of sputum culture in acute pneumonia // JAMA. - 1975. - Vol. 233. - P. 894 - 895. 45.Tillotson J.R., Finland M. Bacterial colonization and clinical superinfection of the respiratory tract complicating antibiotic treatment of pneumonia // J. Infect. Dis. - 1969. - Vol.119. - P. 597 - 624. 46.Verghese A., Berk S.L. Bacterial pneumonia in the elderly // Medicine. - 1983. - Vol. 62. - P. 271 - 285. 47.Verhelst R., Kaijalainen T., De Baere T., et al. Comparison of five techniques for identification of optochin-resistant pneumococcus-like isolates // J. Clin. Microbiol. - 2003. - Vol. 41. - P. 3521 - 3525. 48.Verkooyen R.P., Willemse D., Hiep-van Casteren, et al. Evaluation of PCR, culture and serology for diagnosis of Chlamydia pneumoniae respiratory infections // J. Clin. Microbiol. - 1998. - Vol. 36. - P. 2301 - 2307. 49.Welti M., Jaton K., Altwegg M., et al. Development of a multiplex real-time quantitative PCR assay to detect Chlamydia pneumoniae, Legionella pneumophila and Mycoplasma pneumoniae in respiratory tract secretions // Diagn. Micribiol. Infect. Dis. - 2003. - Vol. 45. - P. 85 - 95. 50.Wheat J., Wheat H., Connoly P., et al. Cross-reactivity in Histoplasma capsulatum variety capsulatum antigen assay of urine samples from patients with endemic mycoses // Clin. Infect. Dis. - 1997. - Vol. 24. - P. 1169 - 1171. 51.Wheat L.J., Kauffman C.A. Histoplasmosis // Infect. Dis. Clin. N. Am. - 2003. - Vol. 17. - P. 1 - 19. 52.Xavier R., Henn L., Costa R. Bronchoalveolar lavage in pulmonary tuberculosis // Chest. - 1990. - Vol. 98. - P. 975.
document: $pr: version: 01-2007.1 codepage: windows-1251 type: klinrek id: kli5327367 : 05.3. МЕТОДЫ ВИЗУАЛИЗАЦИИ meta: author: fio[ru]: И.Е. Тюрин codes: next: type: dklinrek code: II.I type: dkli00023 ВВЕДЕНИЕ Методы лучевой диагностики (син.: методы визуализации, методы диагностической радиологии) играют ключевую роль в выявлении, определении характера и распространенности патологического процесса органов дыхания, а также в оценке эффективности проводимого лечения. В течение последних 20 лет в торакальной радиологии произошли кардинальные изменения. В начале 70-х годов XX века появились первые образцы рентгеновских компьютерных томографов, и уже в середине десятилетия стало возможным аксиальное сканирование различных анатомических областей тела, в том числе и органов грудной полости на задержанном дыхании. В 80-х годах разработана методика высокоразрешающей компьютерной томографии для изучения патологии легких, началось клиническое применение магнитно-резонансной томографии и ультразвуковых методов исследования, которые получили широкое распространение в последнем десятилетии прошлого века, в том числе и при исследовании органов дыхания. В этот же период времени произошло становление спиральной технологии сканирования в компьютерной томографии. На ее основе возникли первые клинические образцы программ для трехмерных преобразований и методики компьютерно-томографической ангиографии. Начало нового века характеризуется созданием КТ-аппаратов с многорядными детекторами и интенсивным внедрением в клиническую практику позитронно-эмиссионной томографии как в виде самостоятельного исследования, так и в сочетании с компьютерной томографией.
На фоне революционных преобразований в области современных томографических технологий продолжается интенсивное развитие традиционного рентгеновского исследования. От рутинных рентгенотомографических методик эта область торакальной радиологии перешла к цифровой радиологии, основу которой составляют современные цифровые детекторы рентгеновского излучения. В результате произошедших технологических изменений, традиционное рентгено-радиологическое исследование больных с заболеваниями органов дыхания переросло торакальную радиологию, использующую все современные методы лучевой диагностики: ---традиционное рентгенологическое исследование; ---рентгеновская компьютерная томография (КТ); ---магнитно-резонансная томография (МРТ); ---ультразвуковое исследование (УЗИ); ---радионуклидные исследования; ---позитронно-эмиссионная томография (ПЭТ), в том числе в сочетании с КТ (ПЭТ/КТ); ---интервенционные диагностические и лечебные процедуры под лучевым наведением (рентгеноскопия, УЗИ, КТ). type: dkli00091
|
||||||||
Последнее изменение этой страницы: 2020-11-11; просмотров: 100; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы! infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 18.225.98.190 (0.008 с.) |