Optimization of recipes animal acupuncture points by means of thermometry

Kazeev G.V.¹, Fomicheva N.G.², Taradainik N.P.³, Taradainik T.E.⁴, Nezamaeva O.N.⁴, Bolshakova M.V.¹

¹Russian State Agrarian University, Balashikha, Moscow region, Russia

²Open joint-stock company stud farm No. 1 Moscow, Odintsovo, Moscow region, Russia

³Research Institute of Animal Husbandry, Dubrovitsy, Moscow region, Russia

⁴Russian Academy of management in animal husbandry, Podolsk, Moscow region, Russia

Recommended to make selection of active function acupuncture points by means of measurement temperature in their zones and using for treatment «hot» points only.

 

УДК 619:[618.14-002.153 +618.14-002.3]:636.2(574)

ВИДОВОЙ СОСТАВ МИКРОФЛОРЫ МАТОЧНОГО СОДЕРЖИМОГО В ПОСЛЕОТЕЛЬНЫЙ ПЕРИОД

Кемешов Ж.О.

Казахский агротехнический университет им. С.Сейфуллина, Казахстан,
e-mail: [e-mail]

Несмотря на то, что послеродовые эндометриты у высокопродуктивных коров являются предметом многочисленных исследований, разработка методов и способов их терапии и профилактики остается крайне недостаточно изученной, противоречивой и дискуссионной (Нежданов А.Г., 2008; Коба ИС., 2009; Авдеенко В.С., 2011).

Объектами исследований являлись коровы черно-пестрой породы, КХ «Ак береке» Карагандинской области, Республики Казахстан, в первый месяц после отела. Для микробиологических исследований ис­пользовано 790 проб маточных выделений коров больных острым послеродовым эндометритом.

Для микробиологических исследований маточные истечения получали по методике Михайлова Н.Н., Лучко М.А. и Конновой З.С. (1967). С целью опре-деления состава микрофлоры матки осуществляли посев полученного материала на МПА, МПБ, кровяной агар, МПА с 1% глюкозы, среды Эндо, Сабуро, кандида агар сусло-агар и др. Идентификацию изолированных микроорганизмов прово-дили с учетом их морфологических, культуральных свойств по общепринятым методикам. Для определения вида бактерий использовали пластины биохимии-ческие дифференцирующие энтеробактерии и стафилококки научно-произ-водственного объединения «Диагностические системы», г. Нижний Новгород, углеводные среды Гиса. Видовую принадлежность бактерии устанавливали, руководствуясь «Определителем бактерий» Берги (1980) и рекомендациями Михайлова Н.Н. (1983), Карташовой В.М. с соавт. (1988), а грибов - «Определи-телем патогенных, токсигенных и вредных для человека грибов» (1979) и также «Атласом грибов патогенных для сельско-хозяйственных животных и птиц» (1953). Патогенность микроорганизмов изучали путем внутрибрюшного зара-жения белых мышей одномиллиардной взвесью смыва суточной агаровой культуры в дозах 0,2-0,5 мл (200-500 млн микробных клеток).

Определение чувствительности бактерий к антибиотикам проводили на среде АГВ путем наложения стандартных дисков с антибиотиками. Анти-бактериальные средства лекарственных препаратов изучали луночным методом диффузии в агар (Тебякин Е.А., Чайковская СМ., 1959). Оценку чувстви-тельности осуществляли по диаметру зоны задержки роста тест-культур.

Нами изучался видовой состав микрофлоры маточного содержимого коров с первого дня отела по 15 день у животных двух групп: первая – с патологическим течением родов (задержание последа, родовспоможение) – 40 коров, вторая (после нормальных родов) – 40 коров.

Исследованиями установлено, что содержимое матки отелившихся ко­ров в первый день после родов стерильно у 8 (20%) животных с нормальным течением родового процесса, у остальных 32 (80%) коров половые органы контаминированы различной непатогенной микрофлорой: Staph, aureus – 8 (20%), Е. coli – 12 (30%), К. pneumoniae – 6 (15%), Str. pyogenes – 4(10%).

В первый день после родов у коров с задержанием последа содержимое матки в 100%) контаминировано различными условно-патогенными микро-организмами: Staph, aureus – 8 (20%), E. coli – 17 (42,5%), Pr. mirabilis – 6 (15%), K. pneumoniae – 4 (10%), Str. pyogenes – 3 (7,5%).

На третий день после отела у коров с задержанием последа (первая группа) изолировали ранее выделяемые бактерии и дополнительно высевали культуры P.vulgaris, St. epidermidis. Изоляты Staph, aureus, E. coli, P. vulgaris обладали патогенностью в 36% случаев. У коров второй группы видовой состав микрофлоры маточного содержимого не изменился, появились ассоциа­ции микроорганизмов в виде Staph, aureus и Е. coli.

На 5-й день после родов у животных первой группы наблюдали рост различных ассоциаций микроорганизмов: Staph, aureus + Е. coli - 11 (27,5%), Staph, aureus + P. mirabilis - 9 (22,5%), E. coli + P. vulgaris - 5 (12,5%), K. pneumoniae + Staph, aureus + E. coli - 3 (7,5%), Staph, aureus + E. coli + Candida albicans - 3 (7,5%). В монокультуре выделяли следующую микрофлору: Staph, aureus у 5 (12,5%) коров, Е. coli - 4 (10%), P. mirabilis - 3 (7,5%) St. epidermidis 2 (5%). Из них патогенностью обладали культуры Staph, aureus, Е. coli, P. vulgaris, Candida albicans в 46% случаев. У 18 (45%) животных отмечали явные клинические признаки острого гнойно-катарального эндометрита, при котором наблюдали красно-белые или белые с примесью гноя выделения. Экссудат обильно выделялся при дефекации, мочеиспускании и особенно после ночного отдыха животного (на полу в виде лужицы). На внутренней поверхности хвоста, на седалищных буграх он обнаруживался в виде корочек.

Рост микрофлоры в этот же день установили у 29 (72,5%) коров второй группы (с нормальными родами). В основном, у животных этой группы – 18 (45%) выделяли монокультуры: Staph, aureus у 6 (15%) животных, Е. coli – у 7 (17,5%), К. pneumoniae – у 4 (10%), Str. pyogenes – у 3 (7,5%) коров. В ассоциациях микрофлору выделяли у 16 (40%) животных, которая была пред-ставлена следующими культурами микроорганизмов: Staph, aureus + Е. coli - 6 (37,5%о), Staph, aureus + E. coli + P. mirabilis - 3 (18,7%),K. pneumoniae + Staph, aureus + E. coli - 3 (18,7%). У 4 (25%) животных из содержимого матки микрофлора не выделена.

В пробах маточного содержимого, взятых на седьмой день исследования, в первой группе выделяли только ассоциации микроорганизмов, кото­рые были представлены следующими культурами: Staph, aureus + Е. coli – 7 (17,5%), Staph, aureus + E. coli + P. mirabilis – 9 (22,5%), E. coli + P. vulgaris – 4 (10%), K. pneumoniae + Staph, aureus + E. coli – 3 (7,5%), K. pneumoniae + E. coli – 5 (12,5%), Str. pyogenes + P. mirabilis + Candida albicans – 3 (7,5%), Staph, aureus + E. coli + Candida albicans – 3 (7,5%), Staph, aureus + P. mirabilis + Candida albicans – 2 (5%), E. coli + P. vulgaris + Candida albicans – 1 (2,5%), другие микробные ас-социации – 3 (7,5%) случаев. Из них патогенностью обладали культуры Staph, aureus, Str. pyogenes, E. coli, P. vulgaris, mirabilis, Candida albicans в 65% случаев. У 26 (65%) животных отмечали признаки острого гнойно-катарального эндометрита.

При этом во второй группе микрофлора в этот же день была идентична по своему составу микрофлоре, выделенной от животных в пятый день после отела. Однако у 8 животных, у которых микрофлору выделили в ассоциациях, регистрировали явные клинические признаки гнойно-катарального эндометрита в виде красно-белых или белых выделений с примесью гноя. При этом культуры Staph, aureus, Е. coli, P. mirabilis обладали патогенными свой­ствами для белых мышей в 24% случаев.

На девятый день после отела выделены во второй группе (с нормаль­ным течением родов) те же микроорганизмы, что и на седьмой день, но у двух животных к ассоциации культур Staph, aureus + Е. coli, Staph, aureus + E. coli + P. mirabilis прибавились такие культуры микроорганизмов, как Р. vulgaris и Candida albicans, причем эти ассоциации были патогенны. В первой группе картина микробного пейзажа родополового аппарата осталась без изменений. Но из 40 опытных животных, больных острым гнойно-катаральным эндомет-ритом, стало на 12 животных больше, что составило 30% от общего количества коров в этой группе.

На одиннадцатый день после родов у животных в первой группе выделяли следующие ассоциации культур микроорганизмов: Staph, aureus + Е. coli – 7 (17,5%), Staph, aureus + E. coli + P. mirabilis – 9 (22,5%), E. coli + P. vulgaris – 6 (15%>), K. pneumoniae + Staph, aureus + E. coli – 5(12,5%), K. pneumoniae + E. coli – 4 (10%o), Str. pyogenes + P. mirabilis + Candida albicans – 3 (7,5%), Staph, aureus + E. coli + Candida albicans – 3 (7,5%), Staph, aureus + P. vulgaris + Can­dida albicans + Aspergillus fumigatus – 2 (3%), E. coli + P. mirabilis + Candida albicans + Aspergillus fumigatus – 1 (5%), другие микробные ассоциации – 3 (7,5%)случаев. Из них патогенностью обладали изоляты Staph, aureus, Str. pyogenes, E. coli, P. vulgaris, P. mirabilis, Candida albicans в 86% случаев. У 34 (85%>) животного клинические признаки острого гнойно-катарального эндометрита сохранились.

Во второй группе проведенное исследование показало, что микробный фон маточного содержимого животных был аналогичен девятому дню. При этом установлено, что у 8 (20%) коров из содержимого матки микрофлора не выделена; у 15 (37,5%>) коров микрофлора матки представлена различными ассоциациями микроорганизмов, причем эти животные были больны острым гнойно-катаральным эндометритом; у 22 (55%) коров микрофлора изолирована в виде монокультур. Видовой состав микроорганизмов, выделенных из содер-жимого матки оставался без изменений по сравнению с девятым днем после отела.

На пятнадцатый день после родов во второй группе у 23 коров признаков острого гнойно-катарального эндометрита не обнаружено. Однако у 17 живот-ных, что составило 42,5%), выявлены клинические признаки эндометрита и животные были переданы на лечение.

В первой группе клинические признаки эндометрита наблюдали у 36 животного, что составило 90%). Эти животные были переданы на лечение.

Таким образом, установлено, что родополовой аппарат коров после отела, в основном, несвободен от условно-патогенной микрофлоры. Бурный рост микроорганизмов в родополовом аппарате коров с задержанием последа происходит в болышинстве случаев на 3-6 день, а у коров с нормальными родами – на 7-10 день. Отмечено, что у коров с задержанием последа, культуры грибов выделяются из маточного содержимого уже на 4-й день после родов, а у коров с нормальным течением родового процесса культуры грибов изоли­руются из маточных истечений на 8-й день после родов и все эти животные были больны эндометритом.

Литература. 1. Нежданов А.Г., Лободин К.А., Дюльгер Г.П. Гормональный контроль за воспоизводством крупного рогатого скота// Ветеринария, 2008, № 1.- С.3-7.2. Турченко А.Н., Коба И.С., Новикова Е.Н. и др. // Вет еринария Кубани, 2012, № 3. 3. Ливерко И.В., Авдеенко В.С. Применение Магнитно-инфракрасно-лазерного излучения для повышения молочной продуктивности коров// Вестник СГАУ, 2011, № 2.