Методи поверхневого посіву на щільні середовища



Мы поможем в написании ваших работ!


Мы поможем в написании ваших работ!



Мы поможем в написании ваших работ!


ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?

Методи поверхневого посіву на щільні середовища



Метод заснований на тому, що на поверхні щільного середовища відбувається іммобілізація мікроорганізмів, тобто вони втрачають рухливість і при розмноженні утворюють видимі неозброєним поглядом скупчення мікроорганізмів – колонії. При виділенні чистої культури необхідно забезпечити такий розподіл мікроорганізмів на поверхні щільного середовища, щоб колонії утворювалися з окремих клітин і при розростанні не об'єднувалися. Тільки в цьому випадку мікроорганізми, що взяти з окремої колонії, можна використовувати для вирощування чистої культури.

В пробірки з м'ясо – пептонним агаром посів бажано проводити уколом (рис. 8). Якщо розведення досліджуваного матеріалу виконано правильно, на поверхні середовища або в його товщі (залежно від методу посіву) утворяться ізольовані колонії мікроорганізмів, видимі неозброєним оком.

 

Рис. 8. Посів культури мікроорганізмів в щільне середовище уколом

Розсів мікроорганізмів здійснюють на поверхню агарізованого щільного поживного середовища в чашки Петрі або петлею за принципом "штриха, що виснажується", або з суспензії піпеткою з наступним розсіванням шпателем за Дрігальским, або за методом послідовних розведень. Чашки Петрі з щільним середовищем готують заздалегідь (див. 5.1.2.).

Посів методом "штриха, що виснажується" здійснюють бактеріальної петлею, завдаючи дуже часті штрихи на поверхню агарізованого середовища без проміжного пропалювання петлі або пропалюючи петлю після кожного штриха. В останньому випадку на чашку Петрі з сусло-агаром здійснюють посів петлею у вигляді вертикального штриха в лівій частині чашки (рис. 9). Потім петлю обпалюють, охолоджують, торкаючись петлею внутрішньої

Рис. 9. Схема «штриха, що виснажується»: а) перший штрих; 6) другий штрих; в) третій штрих

 

стінки чашки або поверхні агарізованого середовища і проводять горизонтально другий штрих, починаючи від першого. Петлю знову обпалюють, охолоджують і проводять петлею вертикальний штрих, перетинаючи другий штрих. Далі цієї ж петлею (без випалу) наносять на поверхню середовища сітку з горизонтальних і вертикальних штрихів, не торкаючись перших трьох штрихів.

При нанесенні штрихів відбувається розтягування клітин мікроорганізмів по поверхні середовища. З кожним новим штрихом число клітин, що розтягується, зменшується і, якщо спочатку при попаданні на сусло-агар більшої кількості клітин ріст мікроорганізмів буде у вигляді суцільного штриха, то на останніх штрихах повинні вирости окремі колонії з ізольованих клітин. Засіяні чашки Петрі поміщають в термостат і витримують 3...4 доби при 28...32°С.

Розсів шпателем за Дрігальським. Краплю суспензії дріжджових клітин стерильною піпеткою або петлею наносять на поверхню сусло-агару в чашці Петрі і стерильним шпателем Дрігальского розтирають краплю по всій поверхні поживного середовища (рис. 10). Потім шпатель переносять у
другу чашку і втирають культуру, що залишилася на шпателі, в поверхню поживного середовища. і т.і. Зазвичай подібним чином послідовно засівають 3...4 чашки на випадок, якщо в першій буде дуже густий ріст колоній. Цей метод поверхневого посіву іноді називають "мазком, що виснажується". Чашки з засіяними культурами поміщають в термостат і витримують 3...4 доби при 28 ... 32 ° С.

Метод послідовних розріджень більш надійний, тому що дозволяє наносити на поверхню щільного поживного середовища певне число клітин мікроорганізмів. Відомо, що розміри стандартної чашки Петрі забезпечують ізольований ріст не більше ніж 50...100 колоніям. Отже, при внесенні в чашку суспензії, що містить близько 50 клітин, і її рівномірному розподілі по поверхні поживного середовища будуть вирощені ізольовані колонії, що утворилися з окремих клітин. Метод розведень особливо зручний для змішаної культури, яка часто розвивається у виробничих умовах.

 

 

Рис. 10. Посів мікроорганізмів на поверхню щільного середовища в чашках Петрі: а) шпатель Дрігальського, б) положення чашки й руки при посіві шпателем; в) ріст мікроорганізмів після засіву шпателем; г) ріст мікроорганізмів після засіву петлею

У тих випадках, коли відома концентрація клітин у суспензії, можна розрахувати необхідний коефіцієнт розведення, що забезпечує внесення з певним обсягом суспензії необхідного числа клітин (метод граничних розведень). Наприклад, в 1 см3 вихідної дріжджової суспензії міститься 100000 клітин. Якщо градуйованою піпеткою в одну чашку Петрі вносять 0,05 см3 суспензії, то для одержання ізольованих колоній в цьому об’ємі повинно бути 50 клітин. Отже, в 1 см3 суспензії повинно міститися 1000 клітин. Тому вихідну суспензію слід розвести в 100 разів. Для цього у дві стерильні пробірки наливають по 4,5 см3 стерильної водопровідної води. У першу пробірку вносять 0,5 см3 вихідної суспензії, тобто розводять суспензію в 10 разів, і перемішують. Потім з першої пробірки стерильною піпеткою відбирають 0,5 см3 і переносять у другу пробірку, тобто розводять ще в 10 разів. В результаті двох послідовних розведень вихідна суспензія розріджується в сто разів. Після перемішування з другої пробірки розсіюють суспензію на щільне поживне середовище. Засіяні чашки термостатують.

У разі невідомої концентрації клітин у суспензії готують кілька послідовних розведень (рис. 11) у стерильній водопровідній воді з певним коефіцієнтом розведення, зазвичай рівним 10. Для цього 1 см3 вихідної дріжджової суспензії стерильною піпеткою додають в пробірку з 9 см3 стерильної водопровідної води (отримують розведення 1:10), перемішують вміст пробірки і цієї ж піпеткою беруть краплю суспензії, переносять у чашку Петрі і розсівають шпателем по поверхні агарізованого середовища. Наступне розведення готують аналогічним чином, використовуючи замість вихідної суспензії суспензію з розведенням 1:10, 1: I00, 1:1000 і т.д. Для кожного посіву використовують стерильні інструменти (піпетки, шпателі

Рис. 11. Метод послідовних розріджень: а) схема методу; б) колонії мікроорганізмів, що виросли

 

Дрігальского), колба з вихідною суспензією мікроорганізмів і пробірки закриті ватно-марлевимі пробками (на рис. 11,а не показані). Засіяні чашки термостатують. Найчастіше в перших двох чашках утворюються суцільні "газони", тоді як в подальших чашках можна виділити окремі колонії. Якщо для посіву брати піпеткою строго визначений обсяг суспензії, то по числу ізольованих колоній в одній чашці, знаючи розведення, можна розрахувати концентрацію життєдіяльних мікроорганізмів у вихідній суспензії, припускаючи, що кожна колонія утворюється з окремою живої клітини.

Процес виділення чистої культури мікроорганізму методом поверхневого посіву на щільні середовища закінчується пересіванням бактеріальної петлею мікроорганізмів з однієї колонії, що зросла ізольовано, в пробірку з поживним середовищем. Накопичення чистої культури в лабораторії проводять у два етапи - вирощування в пробірках, а потім в колбах на рідких і щільних середовищах. Контролем чистоти виділеної культури служить однорідність клітин під мікроскопом і однотипність колоній на чашці Петрі при подальшому розсіві.

 

Питання для самоперевірки

1. Що розуміють під терміном "чиста культура", "клон"?

2. Укажіть призначення чистих культур.

3. На яких прийомах засновані методи виділення чистих культур?

4. Послідовність операцій методу Дрігальського по виділенню чистих культур.

5. Чим відрізняються методи виділення чистих культур?

6. У чому полягає завершальний етап виділення чистих культур?

7. Які ознаки встановлюють при ідентифікації чистих культур?

 

Морфологія мікроорганізмів

Морфологія (від грецьких слів "морфа" – форма, «логос» – вчення) – наука про форму і будову організмів. Видові відмінності мікроорганізмів, що сформувалися в ході еволюції, включають в себе макро-і мікроморфологічні ознаки. Макроморфологічні ознаки об'єднують культуральні ознаки, тобто ознаки, що характеризують зростання культури на щільних середовищах або в рідких. Мікроморфологічні ознаки характеризують окремі вегетативні клітини (форма, розміри), а також способи вегетативного або безстатевого розмноження і утворені при цьому структури. Макроморфологічні ознаки в основному вивчають візуально, мікроморфологічні – за допомогою мікроскопа.

При описанні культур дріжджів вивчають як макро-, так і мікроморфологічні ознаки. Робота проводиться тільки на чистих культурах. Необхідно також використовувати стандартні середовища і методи культивування, так як морфологічні ознаки істотно змінюються в залежності від складу середовища і умов вирощування.

 



Последнее изменение этой страницы: 2016-04-18; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы!

infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 18.210.12.229 (0.006 с.)