Проблемы ВИЧ-инфицирования в хирургии 


Мы поможем в написании ваших работ!



ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?

Проблемы ВИЧ-инфицирования в хирургии



Распространение СПИДа среди населения создаёт угрозу заражения персонала хирургических стационаров, контактирующего с кровью инфицированных пациентов во время операций, перевязок, вливаний, инъекций, пункций, взятия крови для исследования, при диагностических процедурах и др.

Профилактические мероприятия предусматривают своевременное выявление инфицированных больных, для чего всех пациентов хирургических стационаров обследуют на ВИЧ. С целью выявления и изоляции больных СПИДом при клиническом обследовании учитывают такие проявления болезни, как пневмоцистоз, пневмония, саркома Калоши, наличие иммунодефицита, лимфаденопатия, диарея, похудание, кандидоз дыхательных путей. Экстренное исследование крови на антиген ВИЧ позволяет подтвердить или отвергнуть диагноз у больных этой группы.

Правила личной безопасности персонала предусматривают (в соответствии с приказом?86 от 30.08.89 Минздрава СССР) необходимость работы в резиновых перчатках при выполнении любых манипуляций в хирургических стационарах, любом контакте с кровью и биологическими жидкостями больных. Кроме того, во время операции у ВИЧ-инфицированных необходимо применять специальные маски и очки; при попадании крови, биологических жидкостей на различные предметы, кожу, слизистые оболочки необходима обработка их антисептиками. Хирургические инструменты после использования замачивают в 3% растворе хлорамина (30 мин) или 6% растворе пероксида водорода (90 мин) с последующей обычной предстерилизационной обработкой.

Большое значение для профилактики имеет широкое применение шприцев, инструментов, систем для внутривенного вливания разового пользования.

 

Стерилизация инструментов

ДЕЗИНФЕКЦИЯ – это комплекс мероприятий, направленный на уничтожение патогенных микробов в окружающей среде, является первым этапом обработки инструментов и проводится после всех манипуляций перед предстерилизационной очисткой инструментов.

Методы дезинфекции – физические и химические. Физические методы (кипячение в воде или в 2% растворе соды, автоклавирование в автоклаве или стерилизация в воздушном стерилизаторе) в настоящее время не применяются.

Химические методы дезинфекции:

в 3% растворе хлорамина – 60 минут

в 6% растворе перекиси водорода – 60 минут

Современные дезинфектанты: Тримицин ЭМ, Аламинол плюс, Ника-полицид, Аниоксид-1000, Секусепт-актив, Ньюжавел, Тримицин-лайт, Септохлораль, Ника-экстра М, Демос и др.

Используются эти препараты, согласно инструкций, для 5 вариантов инфекций (бактериальные, вирусные, туберкулез, кандидозы, дерматофитии).

Второй этап – предстерилизационная очистка инструментов: заключается в удалении белковых, жировых и механических загрязнений и остатка лекарственных веществ с поверхности инструментов.

Проводятся в моющих растворах, содержащих перекись водорода с синтетическими моющими средствами (СМС) «Прогресс», «Астра», «Айна», «Лотос», «Лотос-автомат» и других, подогретых до 45-50ºС (не выше) или в растворе «Биолот» при температуре 40º в течении 15 минут. Затем инструменты тщательно моют в этом же растворе щетками (ершами) и прополаскивают в проточной воде не менее 10 мин. После проточной воды промывают не менее 0,5 мин. в дистиллированной воде и высушивают при температуре 85ºС до полного исчезновения влаги.

Пример моющих растворов:

1. 5,0 СМС «Лотос» + 3% раствор перекиси водорода 160,0 + 835,0 воды

2. 27,5% пергидроль 17 мл (или 30% - 16 мл или 33% - 14 мл) + 5,0 СМС + до 1 литра воды.

В настоящее время применяются препараты, которые позволяют объединить два первых этапа – дезинфекцию и предстерилизационную очистку инструментов. То есть, предстерилизационную очистку инструментов проводят в том же растворе, в котором проводили дезинфекцию, это:

- алмироль 1,5% - 1 час;

- тетрамин 2% - 15 мин.;

- секусеп 2% - 10 мин.;

- лизафин 1% -1 час. и другие дезинфектанты.

Третий этап – стерилизация инструментов. Проводится методами воздушным, паровым, химическим, лучевым.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПАРОМ

Пар вызывает гидратирование, коагуляцию и гидролиз белков бактерий.

Используемый для этого аппарат называется автоклавом. Он состоит из двух металлических цилиндров, вставленных один в другой, а между ними циркулирует вода. Во внутренний цилиндр помещают для стерилизации биксы (с открытыми отверстиями) с перевязочным материалом, бельем, инструментами.

Автоклав имеет термометр, манометр и предохранительный клапан, который срабатывает при избыточном давлении.

Автоклавируют:

- при давлении пара 2,0+0,1атм. при температуре 132 градуса в течение 20+2 мин.,

- или при давлении 1,1+0,1 атм. при температуре 120 градусов в течение 45+3 мин. По окончании стерилизации пар удаляют, несколько минут сушат материал в биксах в горячем автоклаве. Затем достают биксы из автоклава, закрывают их, а на бирке бикса указывают дату стерилизации.

В настоящее время применяются форвакуумные стерилизаторы (Европейские нормы, приняты в 2004 году). Эти автоклавы имеют не 2, а несколько режимов стерилизации:

- при температуре 134 градусов С и давлении 2 атмосферы - время стерилизации от 5 до 10 мин. (самая короткая программа);

- при температуре 121 градусов С и давлении 1 атмосфера - время стерилизации 20 мин.

Срок сохранения стерильного материала в закрытых биксах - 3 суток, в спец. упаковке - до 1 года. Если белье и материал за это время не использовали, биксы нужно стерилизовать вновь.

Существует несколько способов укладки биксов:

универсальная – в один бикс укладывают разнородный материал;

целенаправленная – в один бикс укладывают белье и перевязочный материал, необходимый для какой-либо определенной операции (например, резекции желудка);

специализированная – в бикс кладут только перевязочный материал, или только операционное белье.

ВОЗДУШНАЯ (СУХОЖАРОВАЯ) СТЕРИЛИЗАЦИЯ

Проводится в сухожаровых шкафах (стерилизаторах) при температуре 170-200º (180º С) и экспозиции 60 мин. (первый, основной режим), или на втором, щадящем режиме – при температуре 160º в течение 150 мин.

В настоящее время применяются воздушные стерилизаторы с принудительной циркуляцией воздуха и системой принудительного охлаждения (время стерилизации и температура те же).

Таким образом можно обрабатывать все термостабильные, негорючие материалы из стекла, металла и фарфора.

Не пригодна сухожаровая стерилизация для перевязочного материала, резины, катетеров, изделий из бумаги и пластиков. Открывать эти стерилизаторы можно только после отключения от сети. Инструменты, простерилизованные в сухожаровом шкафу без упаковки, должны быть использованы сразу после стерилизации. А в пластиковой упаковке высокой прочности стерильность сохраняется до одного года.

ЛУЧЕВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ

Осуществляется ионизирующим излучением большой энергетической мощности, проникающим в стерилизуемый материал на различную глубину и убивающим микробную флору. Используют гамма-излучение кобальта (Со-60) и цезия (Cs-137) большой дозой – не менее 2,5 мрад (25 000 Гр), и бэта – излучение.

Стерилизуют таким образом сыворотки, вакцины, биологические ткани, лекарственные препараты, одноразовые медицинские изделия (системы, шприцы, атравматические иглы, трахеостомические канюли, электрокардиостимуляторы). Но проникающая радиация опасна для людей, что препятствует широкому внедрению этого метода.

ХИМИЧЕСКАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ

(«холодная» стерилизация) – это стерилизация с помощью окиси этилена или растворов сильных антисептиков.

При этом температура применяется не выше температуры коагуляции белка бактерий (45-60° С).

Хирургические инструменты из коррозийно-стойких металлов, пластмассы, полимеров и резины стерилизуют в 6% растворе перекиси водорода при температуре 18º С в течение 360 минут или при температуре 50º С 180 минут. Можно стерилизовать в:

0,1% растворе тергидцида;

0,5% растворе сульфахлорантина - 60 минут

1% растворе дезоксона - I в течение 45 минут

1% растворе хлорцина - 60 минут

0,5% растворе дезама - 60минут

0,5% растворе ДП-2 - 60 минут

Перед стерилизацией инструменты проверяют на качество предстерилизационной очистки. Контроль проводится с целью обнаружения скрытой крови, моющего средства и жира.

1. Азопирамовая проба – на остатки крови и биологических тканей. Смешивают:

азопирам – 10,0

солянокислый анилин – 15,0

спирт этиловый 70º - 100,0

Раствор хранится в холодильнике до 1 мес. Непосредственно перед применением смешивают в равных количествах с 3% раствором перекиси водорода. Проба проводится на салфетке и считается положительной при появлении фиолетового окрашивания, переходящего в розовое. Если остается стойкое фиолетовое окрашивание, значит, инструмент не отмыт от дезраствора и крови.

2. Амидопириновая проба – на наличие остатков крови. Смешивают 5% спиртовой раствор амидопирина, 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода в равных количествах, наносят на инструмент. Проба положительна при появлении сине-зеленого окрашивания.

Фенолфталеиновая проба проводится на определение остатков моющих средств и крови. Готовят 1% спиртовый раствор и наносят 2-3 капли на инструмент. При положительной пробе появляется ярко-розовое окрашивание.

4. Так же проводится бензидиновая проба на кровь (кирпично-красная окраска).

5. Проба с суданом – 3 - на наличие остатков масляных растворов и жировой ткани. Смоченной в растворе судана-3 салфеткой протирают инструмент. При положительной пробе появляется ярко-желтое окрашивание салфетки.

6.В настоящее время для определения концентрации дез. растворов на рабочих инструментах появились полоски экспресс-контроля «Дезиконт» (изменение цвета сравнивают с эталоном на тест-полоске).

При положительных пробах проводится повторная обработка всей партии обработанных инструментов.



Поделиться:


Последнее изменение этой страницы: 2019-04-27; просмотров: 238; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы!

infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 3.144.160.219 (0.017 с.)