Инфекционная безопасность пациента

Данные исследований (литературы) показывают, что значительное число больных приобретают раневую инфекцию во время пребывания в больнице, что напрямую связано с заражением раны во время операции, более половины случаев раневых инфекций связаны с грамотрицательными бактериями, чуть больше четверти грамположительными, а остальные вызываются анаэробными бактериями, грибками и вирусами.

Наиболее распространенные пути передачи инфекции:

• через руки медицинского персонала;
• через такие предметы, как медицинские инструменты и одежда;
• частицы пыли и ядер, подвешенные в воздухе.

Асептика должна соблюдаться при проведении любой инвазивной процедуры, которая осуществляется в обход естественных защитных систем организма, таких как слизистая оболочка и кожа или при работе с инструментами и оборудованием, используемых для проведения этих процедур: внутривенные и мочевые катетеры, хирургический инструментарий. Очень важной процедурой для предупреждения внутрибольничной инфекции является обработка рук перед процедурой, так как руки являются основным путем передачи инфекции.

Перед использованием методов асептики для предупреждения инфекции важно, чтобы эти процедуры были теоретически верными и выполнялись правильно. Руки следует мыть каждый раз после контакта с пациентом и перед выполнением асептических процедур.

Перед мытьем рук следует снимать кольца, браслеты, ручные часы, удалять лак с ногтей.

 

ПРАВИЛ: «УНИВЕРСАЛЬНЫЕ МЕРЫ БЕЗОПАСНОСТИ МЕД.

ПЕРСОНАЛА ОТ ИНФЕКЦИИ»

 Всех пациентов необходимо рассматривать как потенциально инфицированных ВИЧ и другими передаваемыми с кровью инфекциями. Медицинскому персоналу следует помнить и применять 7 правил безопасности для защиты кожи и слизистых оболочек при контакте с кровью или жидкими выделениями организма любого пациента:

1. Мыть руки до и после любого контакта с пациентом.
2. Рассматривать кровь и жидкие выделения всех пациентов как потенциально инфицированные и работать с ними только в перчатках.
3. Сразу после применения помещать использованные шприцы и катетеры в специальный контейнер для утилизации острых предметов, никогда не снимать со шприцев иглодержатели с иглами и не производить никаких манипуляций с использованными иглами.
4. Пользоваться средствами защиты глаз и масками для предотвращения возможного попадания брызг крови и жидких выделений в лицо (во время хирургических операций, манипуляций, катетеризаций и лечебных процедур в полости рта).
5. Использовать специальную влагонепроницаемую одежду для защиты тела от возможного попадания брызг крови или жидких выделений.
6. Рассматривать все белье, запачканное кровью или жидкими выделениями, как потенциально инфицированное.
7. Рассматривать все образцы лабораторных анализов как потенциально инфицированные.

АЗОПИРАМОВАЯ ПРОБА

Качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения на нали чие крови оценивают путём постановки азопирамовой или амидопириновой пробы.

Остаточные количества щелочных компонентов моющего средства определяют с помощью фенолфталеиновой пробы (1% спиртовой раствор фенолфталеина).

С введением методических указаний «Контроль качества предстерилизационнй очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам», утверждённых МЗ СССР 26.05.88г., №28-6/13. Были отменены бензидиновая и ортолидиновая пробы.

                        Приготовление реактива:

• 100 грамм амидопирина + 1-1,5 грамма анилина гидрохлорида смешивают в сухой посуде и заливают 95% этанолом до объёма 1 литр;
• тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов;
•  готовый раствор можно хранить в плотно закрытом флаконе в темноте при 4*С в холодильнике 2 месяца, или в темноте при комнатной температуре 18-23*не более 1го месяца;
• умеренное пожелтение реактива без выпадения осадка в процессе хранения не снижает его рабочих качеств;
•  непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные по объёму количества азопирама и 3% раствора перекиси водорода;
• рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 часа. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше 25*С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 минут;
•  нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре окружающей среды;
• при наличии следов крови на инструментах, немедленно или не позже, чем через 1 минуту  появляется  вначале фиолетовое, затем,  быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово – сиреневое или буроватое окрашивание реактива.