Вакцины, основанные на биотехнологии

 

Доступные вакцины и их преимущества

 

Биотехнология в комбинации с лучшим знанием функций и характеристик гликопротеинов SHV-1 позволила разработать новые вакцины. Например, Quint et al. (1987) удалили последовательность, кодирующую гликопротеин Е, из штамма NIA3. Это привело к получению эффективной маркерной вакцины против болезни Ауески, позволяющей проводить дифференциацию между вакцинированными животными и невакцинированными (вакцины DIVA). Большинство вакцин, используемых в данный момент, получены из вирусной ДНК c делециями генов. Делеция генов, кодирующих гликопротеин Е, используется наиболее часто и позволяет получить аттенуированную живую вирусную вакцину, которая тем не менее защищает от клинических признаков и значительно сокращает уровень экскреции вируса, как вакцинированными, так и инфицированными свиньями. Поскольку некоторые гликопротеины SHV-1 могут индуцировать сильные иммунные ответы, была протестирована эффективность ДНК вакцин, состоящих из плазмид, кодирующих эти гликопротеины. Действительно, ДНК вакцина имеет ряд преимуществ: легкость конструирования и стандартизированное продуцирование плазмид, отсутствие манипуляций с инфекционными частицами, индукция гуморального и клеточного иммунного ответа, избегание влияния материнского иммунитета. Первое исследование, посвященное ДНК вакцинации против инфекции болезни Ауески, было опубликовано в 1997 г. (Gerdts et al., 1997). Использование новейшего поколения плазмид, амплифицирующих уровень транскрипции генов интересующих белков (Dory et al., 2005), было описано, в качестве эффективной стратегии. Коммерциализация этих вакцин пока не проведена.

 

3.2. Особые требования к биотехнологическим вакцинам, если таковые имеются

 

Критерии по оценке качества, безопасности и эффективности вакцин, полученных с помощью биотехнологий, такие же, как и для вакцин, называемых традиционными вакцинами (см. Раздел С.2). Тем не менее, особое внимание следует уделить стабильности конструкции рДНК.

 

 

 

 

 

 

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:

 

BANKS M. (1985). DEtection of antibodies to Aujeszky’s disease virus in whole blood by ELISA-disc. J. Virol. Methods, 12, 41–45.

 

BOUMA A. (2005). Determination of the effectiveness of pseudorabies marker vaccines in experiments and field trials. Biologicals, 33, 241–245.

 

DE LEEUW P.W. & VAN OIRSCHOT J.T. (1985). Vaccines against Aujeszky’s disease: evaluation of their efficacy under standardized laboratory conditions. Vet. Q., 7, 780–786.

 

DORY D., TORCHÉ A.M., BÉVEN V., BLANCHARD P., LOIZEL C. & CARIOLET R. (2005). Effective protection of pigs against lethal Pseudorabies virus infection after a single injection of low-dose Sindbis-derived plasmids encoding PrV gB, gC and gD glycoproteins. Vaccine, 23, 3483–3491.

 

ELOIT M., FARGEAUD D., VANNIER P. & TOMA B. (1989). Development of an ELISA to differentiate between animals either vaccinated with or infected by Aujeszky’s disease virus. Vet. Rec., 124, 91–94.

 

EUROPEAN COMMISSION (2008). Commission Decision of 21 February 2008 on additional guarantees in intra-Community trade of pigs relating to Aujeszky’s disease and criteria to provide information on this disease 2008/185/EC: Official Journal of the European Communities L 316, 5–35.

 

EUROPEAN PHARMACOPOEIA, SIXTH EDITION (2008). Monograph 0744: Vaccinum morbi Aujeszky ad suem inactivatum (inactivated Aujeszky’s disease vaccine for pigs). Monograph 0745: Vaccinum morbi Aujeszky ad suem vivum ad usum parenterale (Aujeszky’s disease live vaccine for pigs for parenteral administration). Council of Europe, Strasbourg, France.

 

HOFFMAN B., BEER M., REID S.M., MERTENS P., OURA, C.A., VAN RIJN P.A., SLOMKA M.J., BANKS J., BROWN I.H., ALEXANDER D.J. & KING D.P. (2009). A review of RT-PCR technologies used in veterinary virology and disease control: sensitive and specific diagnosis of five livestock diseases notifiable to the World Organisation for Animal Health. Vet. Microbiol., 139 (1–2), 1–23.

 

GERDTS V., JÖNS A., MAKOSCHEY B., VISSER N. & METTENLEITER T (1997). Protection of pigs against Aujeszky's disease by DNA vaccination. J. Gen. Virol., 78, 2139–2146.

 

LE POTIER M.F., FOURNIER A., HOUDAYER C., HUTET E., AUVIGNE V., HERY D., SANAA M. & TOMA B. (1998). Use of muscle exudates for the detection of anti-gE antibodies to Aujeszky’s disease virus. Vet. Rec., 143, 385–387.

MA W., LAGER K.M., RICHT J.A., STOFFREGEN W.C., ZHOU F. & YOON K.J. (2008). Development of real-time polymerase chain reaction assays for rapid detection and differentiation of wild-type pseudorabies and genedeleted vaccine viruses. J. Vet. Diagn. Invest., 20 (4), 440–447.

 

MARCHIOLI C.C., YANCEY R.J., WARDLEY R.C., THOMSEN D.R. & POST L.E. (1987). A vaccine strain of pseudorabies virus with deletions in the thymidine kinase and glycoprotein genes. Am. J. Vet. Res., 48, 1577–1583.

 

MENGELING W.L., LAGER K.M., VOLZ D.M. & BROCKMEIER S.L. (1992). Effect of various vaccination procedures on shedding, latency and reactivation of attenuated and virulent pseudorabies virus in swine. Am. J. Vet. Res., 53 (11), 2164–2173.

 

MCFERRAN J.B. & DOW C. (1975). Studies on immunisation of pigs with the Bartha strain of Aujeszky’s disease virus. Res. Vet. Sci., 19, 17–22.

 

MOENNIG V., WOLDESENBERT P., FEY H.R., LIESS B., DOPOTKA H.D. & BEHRENS F. (1982). Comparative evaluation of ELISA and neutralization test for the diagnosis of Aujeszky’s disease. In: Current Topics in Veterinary Medicine and Animal Science 17. Aujeszky’s Disease, Wittmann G. & Hall S.A., eds. Martinus Nijhoff, The Hague, The Netherlands, 51.

 

PEJSAK Z.K. & TRUSZCZYNSKI M. (2006). Aujeszky’s disease (Pseudorabies). In: Diseases of Swine, Ninth Edition, Straw B.E., Zimmerman J.J., D’Allaire S. & Taylor D.J., eds, Blackwell Science, Oxford, UK, 419–433.

 

PENSAERT M., GIELKENS A.L., LOMNICZI B., KIMMAN T.G., VANNIER P. & ELOIT M. (1992). Round table on control of Aujeszky's disease and vaccine development based on molecular biology. Vet. Microbiol., 33 (1–4), 53–67. Review.

 

PENSAERT M., LABARQUE G., FAVOREEL H. & NAUWYNCK H. (2004). Aujeszky’s disease vaccination and differentiation of vaccinated from infected pigs. Dev. Biol. (Basel), 119, 243–254.

 

QUINT W., GIELKENS A., VAN OIRSCHOT J., BERNS A. & CUYPERS H.T. (1987). Construction and characterization of deletion mutants of pseudorabies virus: a new generation of ‘live’ vaccines. J. Gen. Virol., 68, 523–534.

 

SCHOENBAUM M.A., BERAN G.W. & MURPHY D.P. (1990). A study comparing the immunologic responses of swine to pseudorabies viral antigens based on the ELISA, serum virus neutralization, and latex agglutination tests. J. Vet. Diagn. Invest., 2 (1), 29–34.

 

STELLMANN C., VANNIER P., CHAPPUIS G., BRUN A., DAUVERGNE M., FARGEAUD D., BUGAUD M. & COLSON X. (1989). The potency testing of pseudorabies vaccines in pigs. A proposal for a quantitative criterion and a minimum requirement. J. Biol. Stand., 17, 17–27.

 

TOMA B. & ELOIT M. (1986). Pseudorabies virus antibodies (Aujeszky’s disease). In: Methods of Enzymatic Analysis X, Antigens and Antibodies 1, Bergmeyer V.C.H., ed. D-6940 Weinheim, Germany

 

TOMA B., ELOIT M. & TILMANT P. (1986). Sérodiagnostic de la maladie d’Aujeszky: utilisation de prélèvements de sang sur papier filtre. Rec. Med. Vet., 162, 1111–1117.

VAN OIRSCHOT J.T., RZIHA M.J., MOONEN, P.J.L.M., POL J.M. & VAN ZAANE D. (1986). Differentiation of serum antibodies from pigs vaccinated or infected with Aujeszky’s disease virus by a competitive immunoassay. J. Gen. Virol., 67, 1179–1182.

 

VAN OIRSCHOT J.T., TERPSTRA C., MOORMANN R.J.M., BERNS A.J.M. & GIELKENS A.L.J. (1990). Safety of an Aujeszky’s disease vaccine based on deletion mutant strain 783 which does not express thymidine kinase and glycoprotein I. Vet. Rec., 127, 443–446

 

VAN RIJN P.A., WELLENBERG G.J., HAKZE-VAN DER HONING R., JACOBS L., MOONEN P.L. & FEITSMA H. (2004). Detection of economically important viruses in boar semen by quantitative real time PCR technology. J Virol. Methods,120 (2),151–160.

 

VANNIER P. (1986). Immunisation de porcs charcutiers contre la maladie d’Aujeszky avec deux vaccins à adjuvants huileux. Etude des réactions locales. Rec. Med. Vet., 162, 37–44.

VANNIER P., CAPUA I., LE POTIER M.F., MACKAY D.K., MUYLKENS B., PARIDA S., PATON D.J. & THIRY E. (2007). Marker vaccines and the impact of their use on diagnosis and prophylactic measures. Rev. Sci. Tech.; 6 (2), 351–372.

 

VANNIER P., HUTET E., BOURGUEIL E. & CARIOL ET R. (1991). Level of virulent virus excreted by infected pigs previously vaccinated with different glycoprotein deleted Aujeszky’s disease vaccines. Vet. Microbiol., 29, 213–223.

 

VISSER N. & LUTTICKEN D. (1988). Experiences with a gI-/TK-modified live pseudorabies virus vaccine: strain Begonia. In: Vaccination and Control of Aujeszky’s Disease, Van Oirschot J.T., ed. Kluwer Academic Publishers, The Netherlands, 37–44.

 

YONG T., HUAN-CHUN C., SHAO-BO X, YA-LI Q., QI-GAI H. & YU-QI R. (2005). Development of a latex agglutination test using the major epitope domain of glycoprotein E of pseudorabies virus expressed in E. coli to differentiate between immune responses in pigs naturally infected or vaccinated with pseudorabies virus. Vet. Res. Commun., 29 (6), 487–497.

 

YOON H.-A., EO S.-K., ALEYAS A.G., CHA S.-Y., LEE J.-H., CHAE J.-S., JANG H.-K., CHO J.-G. & SONG H.-J. (2006). Investigation of pseudorabies virus latency in nervous tissues of seropositive pigs exposed to field strain. J. Vet Med. Sci., 68 (2), 143–148.

 

*

* *

NB: Существуют Справочные лаборатории МЭБ по болезни Ауески (смотри таблицу в Части 4 данного Руководства по наземным животным или самый последний актуализированный список на вэб-сайте МЭБ:

http://www.oie.int/en/our-scientific-expertise/reference-laboratories/list-of-laboratories/).

Свяжитесь со Справочными лабораториями МЭБ для получения любой дополнительной информации по диагностическим тестам, реагентам и вакцинам против болезни Ауески.