Классификация хирургических ран по степени микробной контаминации

Класс раны	Определение	Примеры
Класс I: чистая	Неинфицированная послеоперационная рана при отсутствии воспаления, при этом не затрагивались дыхательный, пищеварительный, половой или неинфицированный мочевыводящий тракты. Чистые раны закрываются первичным натяжением и в случае необходимости дренируются с помощью закрытого дренажа.	Краниотомия, адреналэктомия, кардиохирургия, открытая редукция и фиксация закрытого перелома, спленэктомия, операция по поводу катаракты, грыжесечение, орхиэктомия, мастэктомия
Класс II: условно-чистая («чисто -контаминированная)	Послеоперационная рана, затрагивающая дыхательный, пищеварительный, половой или мочевыводящий тракты в контролируемых условиях и без необычной контаминации.	Холецистэктомия при отсутствии острого воспаления, аппендэктомия при отсутствии острого воспаления, гистерэктомия (вагинальная, абдоминальная), простатэктомия, ринопластика, оральная хирургия, кесарево сечение, торакотомия, ушивание рваной раны менее 8 ч после травмы.
Класс III: контаминированная («загрязненная»)	Открытые, свежие, травматические раны. Кроме того, в эту категорию включены операции со значительными нарушениями асептики (например, открытый массаж сердца), или сопровождающиеся выраженной утечкой содержимого желудочно-кишечного тракта, а также операции, при которых наблюдается острое негнойное воспаление.	Открытый массаж сердца, аппендэктомия (негангренозный аппендицит, но с воспалением), аппендэктомия при перфорации аппендикса, острый холецистит, ушивание рваной раны более 8 ч после травмы, открытая редукция и внутренняя фиксация открытого перелома с отсрочкой операции (8 ч после перелома), проникаюшая абдоминальная травма без перфорации полых органов, серьезные нарушения стерильности (например, использование нестерильных инструментов, промокание насквозь стерильного поля, отверстие в перчатках работающих в операционной), контакт инородного тела с раной или стерильным полем
Класс IV: «грязная» (инфицированная)	Старые травматические раны с нежизнеспособными тканями, а также послеоперационные раны, в области которых уже имелась инфекция или произошла перфорация кишечника. Подразумевается, что микроорганизмы, способные вызвать ИОХВ, присутствовали в области оперативного вмешательства до операции.	Огнестрельные раны, травматические раны с оставшимися нежизнеспособными тканями, обработка травматической раны, загрязненной травой или землей, вскрытие и дренирование абсцесса, отсроченное первичное натяжение после аппендэктомии по поводу перфоративного аппендицита, «грязная» травма с задержкой операции 10 ч и более

 

 

Приложение 8 Распределение продолжительности операций
№ п/п	Тип операции	75 перцентиль длительности операции (в часах и минутах)

1 Коронарное шунтирование 4 ч 53 мин

2 Операции на сердце 4 ч 45 мин

3 Другие операции на сердечно-сосудистой системе 1 ч 50 мин

4 Операции на легких 2 ч 40 мин Другие операции на органах дыхательной системы 1 ч 26 мин

5 Аппендэктомия 1 ч 10 мин

6 Операции на печени, поджелудочной железе 3 ч 44 мин

7 Холецистоэктомия 1 ч 50 мин

8 Операции на толстой кишке 3 ч

9 Операции на желудке 2 ч 32 мин

10 Операции на тонкой кишке 3 ч 19 мин

11 Лапаротомия 1 ч 53 мин

Другие операции на органах желудочно-кишечного тракта

2 ч 30 мин

13 Ампутация конечностей 1 ч 25 мин

14 Операции на позвоночнике 2 ч 30 мин

15 Операции по поводу открытых переломов 2 ч 10 мин

16 Протезирование 2 ч 45 мин

17 Другие операции костно-мышечной системы 2 ч 03 мин

18 Кесарево сечение 57 мин

19 Абдоминальное удаление матки 2 ч

20 Вагинальное удаление матки 1 ч 58 мин

21 Другие операции на матке 1 ч

22 Удаление почки 3 ч 08 мин

23 Удаление простаты 3 ч 55 мин

24 Другие операции на органах мочеполовой системы 1 ч 30 мин

25 Операции на голове и шее 3 ч 45 мин

26 Другие операции на ушах, носу, рте, пазухах 2 ч 30 мин

27 Операции на головном мозге 4 ч 17 ми

28 Вентрикулярное шунтирование 1 ч 35 мин

29 Другие операции на нервной системе 1 ч 35 мин

30 Операции по поводу грыж 1 ч 35 мин

31 Удаление грудной железы 2 ч 15 мин

32 Трансплантация внутренних органов 7 ч 05 мин

33 Кожная пластика 1 ч 50 мин

34 Удаление селезенки 2 ч 24 мин

35 Сосудистые операции 3 ч 22 мин

36 Операции на эндокринной системе 2 ч 23 мин

37 Операции на глазах 1 ч 55 мин

38 Операции на лимфатической системе 1 ч 48 мин

39 Операции на коже и ее придатках 1 ч 30 мин

Приложение 9

Индекс риска NNIS

 

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Зуева Л.П. Эпидемиологическая диагностика / Л.П. Зуева, С.Р. Еремин, Б.И. Асланов. – СПб: ООО Издательство «Фолиант», 2009. – 312с.

2. Зуева Л.П. Эпидемиология: Учебник / Л.П. Зуева, Р.Х. Яфаев. – СПб: ООО «Издательство Фолиант», 2006. – 752с.

3. Брико Н.И. Эпидемиология: учебник в 2т. / Н.И. Брико, Л.П. Зуева, В.И. Покровский, В.П. Сергиев, В.В. Шкарин. – Москва, Издательство «Медицинское информационное агентство», 2013. – Т. 1. – 832с.. Т.2. – 656с.

4. Simmons BP. Guideline for prevention of surgical wound infections. Infect Control 1982;3:185-196.

5. Cruse P. Wound infection surveillance. Rev Infect Dis

1981;4(3):734-7.

6. Cruse PJ, Foord R. The epidemiology of wound infection: a 10-year prospective study of 62,939 wounds. Surg Clin North Am 1980;60(1):27-40.

7. SHEA, APIC, CDC, SIS. Consensus paper on the surveillance of surgical wound infections. Infect Control Hosp Epidemiol 1992;13(10):599-605.

8. Gil-Egea MJ, Pi-Sunyer MT, Verdaguer A, Sanz F, Sitges-Serra A, Eleizegui LT. Surgical wound infections: prospective study of 4,486 clean wounds. Infect Control 1987;8(7):277-80.

9. Barber GR, Miransky J, Brown AE, Coit DG, Lewis FM, Thaler HT, et al. Direct observations of surgical wound infections at a comprehensive cancer center. Arch Surg 1995;130(10):1042-7.

10. Haley RW, Culver DH, Morgan WM, White JW,

Emori TG, Hooton TM. Identifying patients at high risk of surgical wound infection. A simple multivariate index of patient susceptibility and wound contamination. Am J Epidemiol 1985;121:206-15.

11. Culver DH, Horan TC, Gaynes RP, Martone WJ, Jarvis WR, Emori TG, et al. Surgical wound infection

rates by wound class, operative procedure, and patient

risk index. National Nosocomial Infections Surveillance System. Am J Med 1991;91(Suppl 3B):152S-7S.

12. Richet HM, Chidiac C, Prat A, Pol A, David M, Maccario M, et al. Analysis of risk factors for surgical wound infections following vascular surgery. Am J Med 1991;91(Suppl 3B):170S-172S.

13. Condon RE, Schulte WJ, Malangoni MA, Anderson-

Teschendorf MJ. Effectiveness of a surgical wound surveillance program. Arch Surg 1983;118:303-7.

14. Haley RW, Culver DH, White JW, Morgan WM, Emori TG, Munn VP. The efficacy of infection

surveillance and control programs in preventing

nosocomial infections in US hospitals. Am J Epidemiol 1985;121:182-205.

15. Lennard ES, Hargiss CO, Schoenknecht FD. Postoperative wound infection surveillance by use of

bacterial contamination categories. Am J Infect

Control 1985;13:147-53.

16. Olson MM, Lee JT Jr. Continuous, 10-year wound infection surveillance. Results, advantages, and unanswered questions. Arch Surg 1990;125:794-803.

17. Olson M, O’Connor MO, Schwartz ML. Surgical

wound infections. A 5-year prospective study of 20,193 wounds at the Minneapolis VA Medical Center. Ann Surg 1984;199:253-9.

18. Weigelt JA. Risk of wound infections in trauma patients. Am J Surg 1985;150:782-4.

19. Weigelt JA, Haley RW, Seibert B. Factors which influence the risk of wound infection in trauma patients. J Trauma 1987;27(7):774-81.

20. Anonymous. New classification of physical status.

Anesthesiology 1963;24:-111.

21. Owens WD. ASA physical status classification: a study on consistency of ratings. Anesthesiology 1978;49:239-43.

22. National Nosocomial Infections Surveillance System.

Nosocomial infection rates for interhospital comparison: limitations and possible solutions. A report from the National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System. Infect Control Hosp Epidemiol 1991;12:609-21.

23. Cardo DM, Falk PS, Mayhall CG. Validation of surgical wound surveillance. Infect Control Hosp Epidemiol 1993;14:211-5.

24. Nichols RL, Smith JW, Klein DB, Trunkey DD, Cooper RH, Adinolfi MF, et al. Risk of infection after penetrating abdominal trauma. N Engl J Med 1984;311:1065-70.

25. Nichols RL, Smith JW, Robertson GD, Muzik AC, Pearce P, Ozmen V, et al. Prospective alterations in

therapy for penetrating abdominal trauma. Arch Surg

1993;128:55-64.

26. Horan TC, Culver DH, Gaynes RP, National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System. Results of a multicenter study on risk factors for surgical site infections (SSI) following C-section (CSEC) [abstract]. Am J Infect Control 1996;24:84.

27. Roy MC, Herwaldt LA, Embrey R, Kuhns K, Wenzel RP, Perl TM. Does the NNIS risk index (NRI) predict which patients develop wound infection (SWI) after cardiothoracic (CT) surgery? [abstract]. 34thInterscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy 1994; Orlando, FL:196.

28. Lee JT. Wound infection surveillance. Infect Dis Clin North Am 1992;6(3):643-56.

29. Mead PB, Pories SE, Hall P, Vacek PM, Davis JH Jr,

Gamelli RL. Decreasing the incidence of surgical wound infections. Validation of a surveillance- notification program. Arch Surg 1986;121:458-61.

30. Kerstein M, Flower M, Harkavy LM, Gross PA. Surveillance for postoperative wound infections: practical aspects. Am Surg 1978;44:210-4.

31. Poulsen KB, Jepsen OB. Failure to detect a general reduction of surgical wound infections in Danish hospitals. Dan Med Bull 1995;42:485-8.

32. Haley RW, Schaberg DR, McClish DK, Quade D,

Crossley KB, Culver DH, et al. The accuracy of retrospective chart review in measuring nosocomial infection rates. Results of validation studies in pilot hospitals. Am J Epidemiol 1980;111(5):516-33.

33. Mulholland SG, Creed J, Dierauf LA, Bruun JN, Blakemore WS. Analysis and significance of

nosocomial infection rates. Ann Surg 1974;180:827-

30.

34. Wenzel RP, Osterman CA, Hunting KJ, Gwaltney JM Jr. Hospital-acquired infections. I. Surveillance in a university hospital. Am J Epidemiol 1976;103:251-60.

35. Simchen E, Shapiro JM, Michel J, Sacks T. Multivariate analysis of determinants of postoperative wound infection: a possible basis for intervention. Rev

Infect Dis 1981;3(4):678-82.

36. Collier C, Miller DP, Borst M. Community hospital surgeon-specific infection rates. Infect Control 1987;8(6):249-54.

Ehrenkranz NJ, Shultz JM, Richter EL. Recorded criteria as a “gold standard” for sensitivity and specificity estimates of surveillance of nosocomial infection: a novel method to measure job performance. Infect Control Hosp Epidemiol 1995;16:697-702.

37. Hirschhorn LR, Currier JS, Platt R. Electronic surveillance of antibiotic exposure and coded discharge diagnoses as indicators of postoperative infection and other quality assurance measures. Infect Control Hosp Epidemiol 1993;14:21-8.

38. Simchen E, Wax Y, Pevsner B, Erdal M, Michel J, Modan M, et al. The Israeli Study of Surgical Infections (ISSI): I. Methods for developing a standardized surveillance system for a multicenter study of surgical infections. Infect Control Hosp Epidemiol 1988;9(6):232-40.

39. Burns SJ, Dippe SE. Postoperative wound infections detected during hospitalization and after discharge in a community hospital. Am J Infect Control

1982;10(2):60-5.

40. Laxson LB, Blaser MJ, Parkhurst SM. Surveillance for the detection of nosocomial infections and the potential for nosocomial outbreaks. Am J Infect Control 1984;12(6):318-24.

41. Mertens R, Jans B, Kurz X. A computerized nationwide network for nosocomial infection

surveillance in Belgium. Infect Control Hosp

Epidemiol 1994;15:171-9.

42. Ehrenkranz NJ. Surgical wound infection occurrence in clean operations; risk stratification for interhospital comparisons. Am J Med 1981;(70):909-14.

43. Gaynes RP, Horan TC. Surveillance of nosocomial infections. In: Mayhall CG, ed. Hospital Epidemiology and Infection Control. Baltimore:Williams & Wilkins;1996. p. 1017-31.

44. Horan TC, Emori TG. Definitions of key terms used in the NNIS system. Am J Infect Control 1997;25:112-6.

45. Warren DK, Quadir WW, Hollenbeak CS, Elward AM, Cox MJ, Fraser VJ. Attributable cost of catheter- associated bloodstream infections among intensive care patients in a nonteaching hospital. Crit Care Med 2006; 34:2084–9.

46. Coopersmith CM, Rebmann TL, Zack JE, et al. Effect of an education program on decreasing catheter- related bloodstream infections in the surgical intensive care unit. Crit Care Med 2002; 30:59–64.

47. Coopersmith CM, Zack JE, Ward MR, et al. The impact of bedside behavior on catheter-related bacteremia in the intensive care unit. Arch Surg 2004; 139:131–6.

48. Nehme AE. Nutritional support of the hospitalized patient. The team concept. JAMA 1980; 243:1906–8.

49. Durbec O, Viviand X, Potie F, Vialet R, Albanese J, Martin C. A prospective evaluation of the use of femoral venous catheters in critically ill adults. Crit Care Med 1997; 25:1986–9.

50. Venkataraman ST, Thompson AE, Orr RA. Femoral vascular catheterization in critically ill infants and children. Clin Pediatr (Phila) 1997; 36:311–9.

51. Durbec O, Viviand X, Potie F, Vialet R, Albanese J, Martin C. A prospective evaluation of the use of femoral venous catheters in critically ill adults. Crit Care Med 1997; 25:1986–9.

 

52. Venkataraman ST, Thompson AE, Orr RA. Femoral vascular catheterization in critically ill infants and children. Clin Pediatr (Phila) 1997; 36:311–9.

 

53. Sheridan RL, Weber JM. Mechanical and infectious complications of central venous cannulation in children: lessons learned from a 10-year experience placing more than 1000 catheters. J Burn Care Res 2006; 27:713–8.

 

54. Stenzel JP, Green TP, Fuhrman BP, Carlson PE, Marchessault RP. Percutaneous central venous catheterization in a pediatric intensive care unit: a survival analysis of complications. Crit Care Med 1989; 17:984–8.

55. Horan TC, Gaynes RP. Surveillance of nosocomial infections. In: Mayhall CG, ed. Hospital Epidemiology and Infection Control. 3rd ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2004:1659-1702.

56. Van Der Kooi, T. I. I., De Boer, A. S., Mannien J, et al. Incidence and risk factors of device-associated infections and associated mortality at the intensive care in the dutch surveillance system. Intensive Care Med. 2007;33(2):271-278.

57. Dumigan DG, Kohan CA, Reed CR, Jekel JF, Fikrig MK. Utilizing national nosocomial infection surveillance system data to improve urinary tract infection rates in three intensive-care units. Clin Perform Qual Health Care. 1998;6(4):172-178.

58. Haley RW, Culver DH, White J.W., et al. The efficacy of infection surveillance and control programs in preventing nosocomial infections in U.S. hospitals. Am J Epidemiol 1985;121:182--205.

59. Haley RW, Morgan WM, Culver DH, et al. Hospital infection control: recent progress and opportunities under prospective payment. Am J Infect Control 1985;13:97--108.

60. CDC. NNIS criteria for determining nosocomial pneumonia. Atlanta, GA: U.S. Department of Health and Human Services, CDC, 2003.

61. Horan TC, White JW, Jarvis WR, et al. Nosocomial infection surveillance, 1984. MMWR 1986;35(SS-1):17--29.

62. Gaynes RP, Solomon S. Improving hospital-acquired infection rates: the CDC experience. Jt Comm J Qual Improv 1996;22:457--67.

63. Josephson A, Karanfil L, Alonso H, Watson A, Blight J. Risk-specific nosocomial infection rates. Am J Med 1991;91:131--7.

64. Gaynes R, Richards C, Edwards J, et al. Feeding back surveillance data to prevent hospital-acquired infections. Emerging Infect Dis 2001;7:295--8.

65. American Hospital Association Committee on Infection within Hospitals. Statement on microbiologic sampling in the hospital. Hospitals 1974; 48:125--6.

66. Eickhoff TC. Microbiologic sampling. Hospitals 1970; 44:86--7.

67. Finelli L, Livengood JR, Saiman L. Surveillance of pharyngeal colonization: detection and control of serious bacterial illness in low birth weight infants. Pediatr Infect Dis J 1994;13:854--9.

68. Glupczynski Y. Usefuness of bacteriologic surveillance cultures for monitoring infection in hospitalized patients. Acta Clin Belg 2001; 56:38-45.

 

[1] Для расчета ДИ частотных признаков можно использовать, например, модуль Whatis программы PEPI.

[2] Не расценивается как инфекция абсцесс шва (минимальное воспаление или отделяемое, ограниченные точками проникновения шовного материала). Не расценивается также как ИОХВ локализованная инфекция колотой раны, которая рассматривается как инфекция кожи или мягких тканей, в зависимости от глубины. Если инфекция в области разреза вовлекает фасциальный и мышечный слои, она расценивается как глубокая ИОХВ.

[3] Данное исключение учитывается, если микробиологические исследования проводились, и их качество не вызывает сомнений

^[4] Инородное тело (например, протез клапана сердца, биотрансплантат сосуда, искусственное сердце, протез головки бедра), которое имплантируется в организм хирургическим методом.

[5] Если инфекция в области разреза вовлекает как область поверхностного разреза, так и фасциальный и мышечный слои, она расценивается как глубокая ИОХВ.

[6] Данное исключение учитывается, если микробиологические исследования проводились, и их качество не вызывает сомнений

^[7] Инородное тело (например, протез клапана сердца, биотрансплантат сосуда, искусственное сердце, протез головки бедра), которое имплантируется в организм хирургическим методом.

[8] Дальнейшая идентификация ИОХВ органа/полости проводится с учетом конкретной анатомической локализации

[9] В тех случаях, когда патогенный или условно-патогенный микроорганизм, выделяемый в посеве крови, является возбудителем сопутствующей нозокомиальной инфекции иной органно-системной локализации, инфекция кровотока классифицируется как вторичная инфекция кровотока. Исключением являются инфекции, связанные с применением устройств внутрисосудистого доступа, которые всегда классифицируются как первичные даже при наличии в области доступа местных признаков инфекции.

[10] Микроорганизмы, представляющие нормальную флору кожи (например, дифтероиды, Bacillus sp., Propionibacterium sp., коагулазонегативные стафилококки или микрококки).

[11] См. сноску 9.

[12] Обнаружение бактериального, грибкового или вирусного антигена (например, Candida sp., herpes simplex, varicella zoster, Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis, стрептококки группы В) экспресс-методами (например, встречный иммуноэлектрофорез, коагуляция, латекс-агглютинация.

[13] Посев мокроты, полученной путем откашливания (отхаркивания), не представляет пользы для диагностики пневмонии, однако может оказаться полезным при идентификации возбудителя и предоставить данные о чувствительности возбудителя к антибиотикам

^[14]Для того, чтобы посевы мочи могли представлять ценность при решении вопроса о том, имеется ли внутрибольничная инфекция, пробы мочи следует отбирать соответствующими методами с соблюдением трбований антисептики, такими как чистый сбор мочи или катетеризация. Положительная культура кончика мочевого катетера не является приемлемым лабораторным тестом для диагностики инфекции мочевыводящих путей.

^[15]Грам-отрицательные бактерии или Staphylococcus saprophyticus

^[16]См. сноску 20

^[17]У детей до года пробы мочи для бактериологического исследования следует отбирать путем катетеризации мочевого пузыря или надлобковой пункции; положительная культура из собирательной емкости ненадежна и должна быть подтверждена исследованием образца, полученного асептически при применении двух вышеупомянутых методов

^[18]У детей до года пробы мочи для бактериологического исследования следует отбирать путем катетеризации мочевого пузыря или надлобковой пункции; положительная культура из собирательной емкости ненадежна и должна быть подтверждена исследованием образца, полученного асептически при применении двух вышеупомянутых методов

[19] Например, нарушения, обнаруживаемые методами УЗИ, компъютерной томографии, ядерно-магнитного резонанса (ЯМР) или радиоизитопного сканирования (с применением галлия или технеция)

[20] т.е. обнаружение ³ 10⁵ микроорганизмов в см³ мочи с повторным выделением того же самого микроорганизма (не более 2 видов микроорганизмов)

[21] т.е. обнаружение ³ 10⁵ микроорганизмов в см³ мочи с повторным выделением того же самого микроорганизма (не более 2 видов микроорганизмов)

[22] 10 лейкоцитов/ см³ мочи или 3 лейкоцита в поле зрения при микроскопии образца нецентрифугированной мочи с высоким разрешением

^[23] Грам-отрицательные бактерии или Staphylococcus saprophyticus

[24] Только в день операции

[25] Отмечайте только в тот день, когда это произошло, и только тогда, когда это произошло спонтанно, без вмешательства хирурга

[26] Абсцесс швов -- минимальное воспаление или отделяемое, ограниченные точками проникновения шовного материала