Методика проведения ПСО (этапы)

• Погрузить инструменты в моющий раствор на 15 минут при температуре 50-55 ⁰ С.

Состав моющего раствора на 1 литр:

• 5 г моющего средства «Лотос», «Лотос-автомат», «Айна», «Астра», «Прогресс»;

• 17 мл перекиси водорода 27,5%;

• 978 мл воды

или

• 170 мл перекиси водорода 3%

• 825 мл воды

• В этом же растворе промыть инструменты ершами или ватно-марлевыми тампонами по 30 секунд на предмет. Обработка ершами резиновых изделий не допускается. Температура раствора в процессе мойки не поддерживается.

• Промыть под проточной водой:

• после моющего средства «Прогресс» - 5 минут;

• после моющих средств «Астра», «Айна», «Лотос», «Лотос-автомат» - 10 минут

• Ополоснуть дистиллированной водой в течение 30 секунд. Для осаждения солей, содержащихся в водопроводной воде.

• Высушить горячим воздухом в сухожаровом шкафу при температуре 80-85 ⁰ С до полного исчезновения влаги.

Примечания:

• Всю ПСО проводить в перчатках.

• Разъемные изделия разобрать.

• Ватно-марлевые тампоны для механической очистки менять после каждой обработки.

• Моющий раствор подогревать только к моменту погружения в него инструмента.

• Соблюдать температурный режим моющего раствора.

• Моющий раствор в течение суток можно подогревать 6 раз или применять его до появления розового
окрашивания (что свидетельствует о загрязнении кровью).

• При применении средства «Биолот» (в состав входят ферменты) на 1 литр моющего раствора используют: 5 г порошка + 995 мл воды.

• Погрузить изделия на 15 минут при температуре 40-45 "С, так как при комнатной температуре биологически активные вещества (ферменты) выделяются очень медленно в раствор, а при высокой разрушаются; промыть под проточной водой в течение 3 минут, ополоснуть в дистиллированной, высушить.

 

Качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

1. Качество предстерилизационной очистки проверяют пробами:

• азопирамовая (универсальная) - на остатки крови, дезинфектантов, остаточные количества щелочных компонентов моющего средства.

• фенолфталеиновая - на остатки моющего средства.

• амидопириновая – на остатки крови.

В современном здравоохранении монопроба (фенолфталеиновая) потеряла свою актуальность. В настоящее

Самоконтроль в ЛПУ проводят:

• в центральных стерилизационных отделениях (ЦСО) — ежедневно;

• в отделениях — не реже одного раза в неделю (организацию и контроль отвечает старшая медсестра).

2. Контролю подлежат: в ЦСО — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену; в отделениях — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3—5 единиц.

3. В случае положительной пробы (изменение цвета реактива) всю партию изделий подвергают повторной очистке. Результаты контроля фиксируют в журналах.

Азопирамовая проба на остатки крови, дезсредств, остаточные количества моющих средств, лекарств, ржавчину.

Состав азопирама: 10%раствор амидопирина, 0,1— 0,15% раствор солянокислого анилина, 95% этиловый спирт.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4 °С (в холодильнике) 2 месяца; при комнатной температуре - не более месяца.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Рабочий раствор может быть использован в течение 1—2 часов.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости: 2—3 капли наносят на кровяное пятно.

Не позже чем через 1 минуту учитывают реакцию. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, пользоваться реактивом нельзя.

Индикация загрязнений

Проба отрицательная — реактив не изменил цвет — предстерилизационная очистка проведена качественно.

Проба положительная — реактив изменил свой цвет на фиолетовый, переходящий в:

розово-сиреневый – наличие крови;

буроватый – на CMC, ржавчину, дезсредства. Окрашивание, наступившее позже чем через 1 минуту, не учитывается.

Фенолфталеиновая проба на остатки моющего средства.

Используют 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Раствор хранят в холодильнике в течение 1 месяца.

Индикация загрязнений

Проба отрицательная - реактив не изменил цвет — предстерилизационная очистка проведена качественно.

Проба положительная – реактив изменил свой цвет на розово-малиновый в течение 1 минуты. Окрашивание, наступившее позже чем через 1 минуту, не учитывают.

При положительной пробе проводят повторную предстерилизационную обработку всего инструмента, начиная с этапа промывания под проточной водой.

 

Виды и методы стерилизации

Инструменты, бывшие в употреблении (биозагрязненные кровью, слюной, гноем, мочой), сразу же подвергают дезинфекции, затем предстерилизационной очистке, только после этого проводят стерилизации в лечебном отделении или ЦСО.

 

Стерилизация (от лат. sterilis — лат. обеспложивание) метод, обеспечивающий гибель на стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных организмов.

Стерилизации должны подвергать все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

 

Методы и виды стерилизации:

• Физический метод (паровой, воздушный, гласперленовый, радиационный).

• Химический метод (газовый, растворы стерилянтов).

• Радиационный метод (установки с радиактивным источником излучения для промышленной стерилизации изделий однократного применения)

Выбор метода стерилизации зависит от многих факторов:

• материалов, из которых состоит изделие;

• конструктивного исполнения изделий;

• необходимости длительного сохранения стерильности;

• оперативности использования.