Специфические механизмы мышечной адаптации

Увеличение активации агонистов мышц после HRST могло произойти из-за возрастания рекрутирования ДЕ или частоты импульсации. Во время медленного сокращения после отдыха вклад этих двух факторов в увеличение активации очень зависит от рассматриваемой мышцы. У больших мышц, возможно больше проявляются процессы рекрутирования, чтобы достигнуть высокh3их уровней произвольной силы [236, 237]. Достоверное доказательство увеличения рекрутирования ДЕ под воздействием тренировки потребовало бы демонстрации ранее не вовлеченных в работу ДЕ, которые рекрутировались после тренировки. К сожалению, это вне возможности методов, которые применяются в настоящее время. Ясно, что оба способа: увеличение рекрутирования и/или возрастание частоты требует вовлечения некоторых форм нервной регуляции на спинном или супраспинальном уровне.

Частота импульсации

Используя большой сетчатый электрод, Holtermann et al. [194] оценили изменения в средней частоте SEMG (поверхностной ЭМГ) после 9 тренировочных занятий со сгибателями спины. Они не нашли изменений в средней частоте, которая расценивается как мера рекрутирования ДЕ, [238] несмотря на 16%-ое увеличение силы. Техника записи внутримышечных потенциалов ЭМГ, позволяет точно исследовать частоту импульсации ДЕ (MUFF) у людей в естественных условиях. MUFF может быть намного выше в течение очень кратких периодов (первые три импульса) в начале максимального произвольного усилия (100–200Hz [200]), однако частота импульсации может значительно снизиться в момент генерации максимального уровня силы (20–30Hz) [236,237,239,240]. Любопытно, что при непроизвольной стимуляции отношение «сила-частота», наблюдаемое у ДЕ мышц человека, предполагает, что уровень их импульсации должен быть, по крайней мере, в 50 Гц, чтобы достигнуть максимального значения силы при тетаническом сокращении [241,242]. Взятое в изоляции, это могло бы подтвердить значительную способность к увеличениям, возможно до 2-кратного, в MUFF во время максимальных произвольных сокращений, способствуя увеличенной силе после тренировки. Однако, считается, что явления, такие как подобные резкому повышению силы на единичный стимул в начале тетанического сокращения [243] и вызванные потенциалы [244] могут вызвать большее производство силы на более низких частотах, чем ожидаемые. Начальная короткая, высокочастотная импульсация в 2–4 импульса в начале сокращения увеличивает последующее производство силы и известна как catch-like способность скелетной мышцы [243]. Twitch потенциалы также относятся к большему сократительному ответу на единственный пульс после деятельности мышц, что может облегчить тетанические сокращения на более низких частотах иннервации. Во время максимальной генерации силы MUFF, как находили, была выше в мышцах у пауэрлифтеров пожилого возраста по сравнению с нетренируемыми лицамnbsp;несмотря на их гипертрофию (Направление мышечных волокон относительно соединительной ткани и сухожилия /pи соответствующего возраста (23,8 Гц против 19,1 Гц, соответственно) [245]. Два длительных по времени исследования нашли увеличение MUFF после HRST [174, 200]. Van Cursem et al. [200] нашли у тренируемых в течение 12 недель (60 учебных сессий) посредством быстрых, баллистических сокращений, более раннюю активацию ДЕ, экстра дублеты (дуплеты) и увеличенную MUFF в начале баллистических сокращений после тренировки. Возможно эта адаптация будет способствовать увеличению в скорости развития силы и ускорения во время быстрых динамических сокращений, однако эффект их влияния на уровень MUFF и силы в момент максимального медленного произвольного сокращения неизвестен. Patten et al. [174] не сообщил ни о каком эффекте влияния на MUFF после двух недель силовой тренировки. В этом исследовании самые большие изменения (в силе и MUFF) произошли между двумя основными тестами, возможно из-за незнакомой природы движения (отведение 5-го пальца), небольшого числа испытуемых и короткой продолжительности обучения.

Синхронизация

Синхронизация измеряется уровнем корреляции между временами потенциалов действия активных ДЕ. ДЕ спортсменов, занимающихся силовыми упражнениями, как правило, более синхронизированные, чем у неподготовленных людей. Силовые тренировки, так же, по всей видимости, усиливают синхронизацию ДЕ [246, 247]. Однако не ясно, как повышение синхронизации может развивать силу [51, 176], т.к. при частоте импульсации, эквивалентной максимальному произвольному сокращению в развитии силы эффект синхронизации не проявляется [248,249].

Кортикальные адаптации

Методы нейровизуализации и транскраниальной магнитной стимуляции были протестированы на людях, тренирующихся в режиме низкой мышечной активности, чтобы вызвать изменения в первичной моторной коре, такие как: формирование двигательных представлений и увеличение корковой или кортикоспинальной возбудимости для специфичных мышц и движений. Подобное привыкание может также помочь объяснить, как воображаемые тренировки/ментальные практики могут повысить силу человека. Однако более детальные исследования с использованием методов транскраниальной стимуляции в ответ на повышение силы обнаружили неожиданный спад в кортикоспинальной возбудимости первой дорсальной межкостной и двуглавой мышцы плеча, что ставит под сомнение любую значительную корковую адаптацию.

Спинальные рефлексы

Афферентная обратная связь в форме спинальных рефлексов во время сокращения могла увеличить или уменьшить воздействие супраспинальных воздействий на мышцу. Были исследованы вызванные спинальные рефлексы, чтобы изучить любые изменения в мотонейронах спинного мозга после HRST, особенно их чувствительность к афферентной обратной связи. Рефлекс Хоффмана (или H-рефлекс) является искусственно вызванным рефлексом, который используется, чтобы проверить эффективность передачи стимула, поскольку это проходит от афферентных волокон через мотонейронный пул к двигательным волокнам. Как предполагается, это дает приблизительную оценку возбудимости мотонейронного пула [260]. V-волны — электрофизиологический вариант H-рефлекса, но будучи зарегистрированы во время максимального произвольного сокращения (MVC),они могут отразить моторную деятельность нейронов [261]. Ответ на H-рефлекс был измерен в покое, и он не изменился после тренировки [223], хотя уместность этого измерения была подвергнута сомнению [261]. Во время максимальных произвольных изометрических сокращений Sale et al. измерили V1 и V2 волны после тренировки, и сообщили, что нет никакого потенцирования [262] и существенного увеличения [166]. В недавнем исследовании Aagaard et al. [261] была тщательно оценена амплитуда M-волны (М-рефлекса), даже во время максимальных сокращений. Эти авторы нашли, что после 14 недель HRST наблюдалось 20%-ое увеличение изометрической силы, которое сопровождалось увеличенными амплитудами V-волны и H-рефлекса (55% и 19%, соответственно), рис.7.

Рис. 7. V-волна и амплитуда H-рефлекса (выраженные относительно максимального составного потенциала действия мышц [Mmax]) измеренные во время изометрических максимальных произвольных сокращений до и после 14 недель силовой тренировки (адаптированные данные Aagaard et al. [261] с разрешения авторов).

 

Увеличение амплитуды V-волны указывает на увеличенный поток от мотонейронов спинного мозга, который, как считают исследователи происходил наиболее вероятно из-за увеличенной частоты разрядов мотонойронов. Увеличение H-рефлекса после тренировки предполагает, что увеличение потока от мотонейронов было вызвано, частично, повышением их возбудимости, хотя большее увеличение V-волны по сравнению с H-рефлексом указывает на увеличенную супраспинальную активацию. Пока эти изменения убеждают, что они способствуют увеличению силы, хотя количественное функциональное значение этих эффектов остается неизвестным [263], и эти доказательства ясно противоречат удивительному уменьшению в кортикоспинальной возбудимости, которая наблюдалась после тренировки [258,259].

Коактивация антагонистов

Степень активации антагонистов во время любого упражнения зависит от широкого диапазона факторов, включая скорость и диапазон движения [264]. Любое сокращение антагонистов явно уменьшает уровень развития силы, но это также ослабляет, из-за реципрокной иннервации, возможность полностью активировать мышцы-агонисты. Исследования поперечного сечения нашли более низкую коактивацию в силе/мощности у тренируемых атлетов, чем у нетренируемых [265,266]. Carolan and Cafarelli [267] нашли существенное уменьшение в активации антагонистов, которая главным образом произошла на первой неделе изометрической программы тренировки четырехглавой мышцы бедра. После шести месяцев HRST четырехглавой мышцы бедра Hakkinen et al. [268] нашли уменьшение активации мышц задней поверхности бедра у стариков, но не нашли этого эффекта у лиц среднего возраста. Однако, другие исследования не нашли изменений в активации антагонистов после 9 недельных тренировок сгибателей спины (dorsiflexor) [194] или 14 недель тренировки разгибателей голени у пожилых людей [165]. Во время более сложных мультисоставных движений или всего тела уровень активации антагонистов может быть больше, возможно обеспечивая больше возможности для сокращения и тренировки.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Увеличенной силе после HRST, как известно, способствует широкий диапазон морфологических и неврологических факторов. Увеличение размера мышц, выполняющих упражнения, как правило, расценивается как главная долгосрочная адаптация, хотя она очень вариативна между мышцами, подвергнутыми тренировке и вдоль их длины. Гипертрофия целой мышцы, кажется, линейно возрастает в течение первых шести месяцев тренировки и приписывается гипертрофии отдельных мышечных волокон посредством процессов гипертрофии и пролиферации миофибрилл, хотя гиперплазия может играть второстепенную роль. Может быть, увеличение отношения количества миоядер к объему цитоплазмы связано с супер регуляцией транскрипции или трансляции, но клетки-сателлиты активируются на очень ранних стадиях тренировки. Их быстрая пролиферация и соединение с существующими мышечными волокнами увеличивают число миоядер и это, по-видимому, является основой гипертрофии мышц. Гипертрофия мышечного волокна, как правило, больше в волокнах II типа и сопровождается увеличением угла волокна перистости, который способствует большему увеличению физиологического поперечника (PCSA) и производству силы, чем увеличение анатомического поперечника (ACSA). Вероятнее всего, что эти два фактора вносят основной вклад в увеличение силы всей мышцы и ее напряжения, несмотря на то, что для отдельного мышечного волокна напряжение не меняется. Влияние косвенных факторов (например, пересекающиеся эффекты, специфика задачи, быстрый прирост в силе в начале тренировки), и пока не категоричное влияние существенной нервной адаптации, которая может быть преобладающей при обучении и изменении в межмышечной координации агонистов, антагонистов и синергистов. Быстрое повышение силы в начале тренировки, в течение первых двух недель, которое происходит, прежде всего, из-за адаптации нервной системы, значительно увеличивает нагрузки и тренировочные стимулы, к которым мышца затем должна адаптироваться. Это помогает максимизировать дальнейшее увеличение силы, особенно морфологическую адаптацию, которая происходит, в то время тренировочного процесса. Более чувствительное использование интерполированной техники вызванных сокращений предполагает, что нетренированные люди могут быть не в состоянии полностью активировать мышцы-агонисты, и этот центральный резерв, кажется, зависит от диапазона специфических факторов задачи. Кроме того, пока спорное, исследование суммарной электрической активности (SEMG) указывает на увеличение активации агонистов после тренировки. Исследования, использующие трансчерепную стимуляцию, не нашли доказательств корковой или кортикоспинальной адаптации и противоречат исследованиям спинных рефлексов, которые указывают на увеличение супраспинального потока, и на возбудимость мотонейронов и вероятное увеличение MUFF после тренировки.

Подтверждения. В подготовке этого обзора не использовались никакие источники финансирования. У авторов нет конфликтов интересов, которые непосредственно относятся к содержанию этого обзора.

ЛИТЕРАТУРА

1. Morganti CM, Nelson ME, Fiatarone MA, et al. Strength improvements with 1 yr of progressive resistance training in older women. Med Sci Sports Exerc 1995; 27: 906-12

2. Paavolainen L, Paavolainen L, Hakkinen K, et al. Explosive strength training improves 5-km running time by improving running economy and muscle power. J Appl Physiol 1999; 86: 1527-33

3. Garfinkel S, Cafarelli E. Relative changes in maximal force, emg, and muscle cross-sectional area after isometric training. Med Sci Sports Exerc 1992; 24: 1220-7

4. Housh DJ, Housh TJ, Johnson GO, et al. Hypertrophic response to unilateral concentric isokinetic resistance training. J Appl Physiol 1992; 73: 65-70

5. Tracy B, Ivey F, Hurlbut D, et al. Muscle quality: II. Effects of strength training in 65- to 75-yr-old men and women. J Appl Physiol 1999; 86: 195-201

6. Abe T, De Hoyos D, Pollock M, et al. Time course for strength and muscle thickness changes following upper and lower body resistance training in men and women. Eur J Appl Physiol 2000; 81: 174-80

7. Engstrom CM, Loeb GE, Reid JG, et al. Morphometry of the human thigh muscles: a comparison between anatomical sec- tions and computer tomographic and magnetic-resonance images. J Anat 1991; 176: 139-56

8. Narici M, Hoppeler H, Kayser B, et al. Human quadriceps cross- sectional area, torque and neural activation during 6 months strength training. Acta Physiol Scand 1996; 157: 175-86

9. Alway SE, Grumbt WH, Stray-Gundersen J, et al. Effects of resistance training on elbow flexors of highly competitive bodybuilders. J Appl Physiol 1992; 72: 1512-21

10. Tracy B, Ivey F, Metter JE, et al. A more efficient magnetic resonance imaging-based strategy for measuring quadriceps muscle volume. Med Sci Sports Exerc 2003; 35: 425-33

11. Aagaard P, Andersen J, Dyhre-Poulsen P, et al. A mechanism for increased contractile strength of human pennate muscle in response to strength training: changes in muscle architecture. J Physiol 2001; 534: 613-23

12. Fukunaga T, Roy RR, Shellock FG, et al. Specific tension of human plantar flexors and dorsiflexors. J Appl Physiol 1996; 80: 158-65

13. Roman WJ, Fleckenstein J, Straygundersen J, et al. Adaptations in the elbow flexors of elderly males after heavy-resistance training. J Appl Physiol 1993; 74: 750-4

14. Keen DA, Yue GH, Enoka RM. Training-related enhancement in the control of motor output in elderly humans. J Appl Physiol 1994; 77: 2648-58

15. Aagaard P, Simonsen E, Andersen J, et al. Neural inhibition during maximal eccentric and concentric quadriceps contraction: effects of resistance training. J Appl Physiol 2000; 89: 2249-57

16. Bamman MM, Newcomer BR, Larson-Meyer DE, et al. Evalua- tion of the strength-size relationship in vivo using various muscle size indices. Med Sci Sports Exerc 2000; 32: 1307-13

17. Fukunaga T, Miyatani M, Tachi M, et al. Muscle volume is a major determinant of joint torque in humans. Acta Physiol Scand 2001; 172: 249-55

18. Maganaris CN, Baltzopoulos V, Sargeant AJ. Changes in Achilles tendon moment arm from rest to maximum isometric plantar flexion: in vivo observations in man. J Physiol 1998; 510: 977-85

19. Maganaris CN, Baltzopoulos V. Predictability of in vivo changes in pennation angle of human tibialis anterior muscle from rest to maximum isometric dorsiflexion. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1999; 79: 294-7

20. Narici MV, Binzoni T, Hiltbrand E, et al. In vivo human gastrocnemius architecture with changing joint angle at rest and during graded isometric contraction. J Physiol 1996; 496: 287-97

21. Wilmore JH. Alterations in strength, body composition and anthropometric measurements consequent to a 10-week weight training-program. Med Sci Sports Exerc 1974; 6: 133-8

22. Cureton KJ, Collins MA, Hill DW, et al. Muscle hypertrophy in men and women. Med Sci Sports Exerc 1988; 20: 338-44

23. Welle S, Totterman S, Thornton C. Effect of age on muscle hypertrophy induced by resistance training. J Gerontol A Biol Sci Med Sci 1996; 51: M270-5

24. Kadi F, Bonnerud P, Eriksson A, et al. The expression of androgen receptors in human neck and limb muscles: effects of training and self-administration of androgenic-anabolic steroids. Histochem Cell Biol 2000; 113: 9

25. Edwards RH, Young A, Hosking GP, et al. Human skeletal muscle function: description of tests and normal values. Clin Sci Mol Med 1977; 52: 283-90

26. Schantz P, Randall-Fox E, Hutchison W, et al. Muscle fibre type distribution, muscle cross-sectional area and maximal voluntary strength in humans. Acta Physiol Scand 1983; 117: 219-26

27. Neder JA, Nery LE, Silva AC, et al. Maximal aerobic power and leg muscle mass and strength related to age in non-athlethic males and females. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1999; 79: 522-30

28. Toft I, Lindal S, Bønaa KH, et al. Quantitative measurement of muscle fiber composition in a normal population. Muscle Nerve 2003; 28: 101-8

29. Asmussen E. Development patterns in physical performance capacity. In: Larsson L, editor. Fitness, health and work capacity: international standards for assessment. New York: Mac- Millan, 1974: 8

30. Hettinger T. Physiology of strength. Springfield (IL): CC Thomas, 1961

31. Brown CH, Wilmore JH. The effects of maximal resistance training on the strength and body composition of women athletes. Med Sci Sports 1974; 6: 174-7

32. Wells CL. Women, sport and performance: a physiological perspective. Champaign (IL): Human Kinetics, 1985

33. Hakkinen K, Kallinen M, Linnamo V, et al. Neuromuscular adaptations during bilateral versus unilateral strength training in middle-aged and elderly men and women. Acta Physiol Scand 1996; 158: 77-88

34. Roth SM, Ivey FM, Martel GF, et al. Muscle size responses to strength training in young and older men and women. J Am Geriatr Soc 2001; 49: 1428-33

35. Colliander EB, Tesch PA. Responses to eccentric and concentric resistance training in females and males. Acta Physiol Scand 1991; 141: 149-56

36. Lexell J, Downham DY, Larsson Y, et al. Heavy-resistance training in older scandinavian men and women: short- and long-term effects on arm and leg muscles. Scand J Med Sci Sports 1995; 5: 329-41

37. Weiss LW, Clark FC, Howard DG. Effects of heavy-resistance triceps surae muscle training on strength and muscularity of men and women. Phys Ther 1988; 68: 208-13

38. O’Hagan FT, Sale DG, MacDougall JD, et al. Response to resistance training in young women and men. Int J Sports Med 1995; 16: 314-21

39. Hubal MJ, Gordish-Dressman H, Thompson PD, et al. Variability in muscle size and strength gain after unilateral resistance training. Med Sci Sports Exerc 2005; 37: 964-72

40. Knapik JJ, Wright JE, Kowal DM, et al. The influence of US army basic initial entry training on the muscular strength of men and women. Aviat Space Environ Med 1980; 51: 1086-90

41. Delmonico MJ, Kostek MC, Doldo NA, et al. Effects of moderate velocity strength training on peak muscle power and movement velocity: do women respond differently than men? J Appl Physiol 2005; 99: 1712-8

42. Fiatarone MA, Marks EC, Ryan ND, et al. High-intensity strength training in nonagenarians: effects on skeletal-muscle. J Am Med Assoc 1990; 263: 3029-34

43. Harridge SDR, Kryger A, Stensgaard A. Knee extensor strength, activation, and size in very elderly people following strength training. Muscle Nerve 1999; 22: 831-9

44. Ivey F, Tracy B, Lemmer J, et al. Effects of strength training and detraining on muscle quality: age and gender comparisons. J Gerontol A Biol Sci Med Sci 2000; 55: B152-7

45. Hakkinen K, Newton RU, Gordon SE, et al. Changes in muscle morphology, electromyographic activity, and force production characteristics during progressive strength training in young and older men. J Gerontol A Biol Sci Med Sci 1998; 53: B415-23

46. Narici MV, Roi GS, Landoni L, et al. Changes in force, cross- sectional area and neural activation during strength training and detraining of the human quadriceps. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1989; 59: 310-9

47. Hakkinen K, Pakarinen A, Kraemer WJ, et al. Selective muscle hypertrophy, changes in EMG and force, and serum hormones during strength training in older women. J Appl Physiol 2001; 91: 569-80

48. Hakkinen K, Alen M, Kraemer WJ, et al. Neuromuscular adaptations during concurrent strength and endurance training versus strength training. Eur J Appl Physiol 2003; 89: 42-52

49. Kanehisa H, Funato K, Kuno S, et al. Growth trend of the quadriceps femoris muscle in junior olympic weight lifters: an 18-month follow-up survey. Eur J Appl Physiol 2003; 89: 238-42

50. McDonagh MJN, Davies CTM. Adaptive response of mammalian skeletal-muscle to exercise with high loads. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1984; 52: 139-55

51. Jones DA, Rutherford OM, Parker DF. Physiological changes in skeletal muscle as a result of strength training. Q J Exp Physiol Cogn Med Sci 1989; 74: 233-56

52. MacDougall JD, Elder GCB, Sale DG, et al. Effects of strength training and immobilization on human-muscle fibers. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1980; 43: 25-34

53. Viitasalo JT, Saukkonen S, Komi PV. Reproducibility of mea- surements of selected neuromuscular performance variables in man. Electromyogr Clin Neurophysiol 1980; 20: 487-501

54. Schantz P, Fox ER, Norgren P, et al. The relationship between the mean muscle fibre area and the muscle cross-sectional area of the thigh in subjects with large differences in thigh girth. Acta Physiol Scand 1981; 113: 537-9

55. Halkjaer-Kristensen J, Ingemann-Hansen T. Variations in single fibre areas and fibre composition in needle biopsies from the human quadriceps muscle. Scand J Clin Lab Invest 1981; 41: i391- 5

56. Blomstrand E, Celsing F, Friden J, et al. How to calculate human muscle fibre areas in biopsy samples: methodological considerations. Acta Physiol Scand 1984; 122: 545-51

57. Mahon M, Toman A, Willan PL, et al. Variability of histochemical and morphometric data from needle biopsy specimens of human quadriceps femoris muscle. J Neurol Sci 1984; 63: 85-100

58. Lexell J, Taylor CC. Variability in muscle fibre areas in whole human quadriceps muscle: how much and why? Acta Physiol Scand 1989; 136: 561-8

59. Gollnick PD, Matoba H. The muscle fiber composition of skeletal muscle as a predictor of athletic success: an overview. Am J Sports Med 1984; 12: 212-7

60. Campos GER, Luecke TJ, Wendeln HK, et al. Muscular adaptations in response to three different resistance-training regimens: specificity of repetition maximum training zones. Eur J Appl Physiol 2002; 88: 50-60

61. Staron RS, Malicky ES, Leonardi MJ, et al. Muscle hypertrophy and fast fiber type conversions in heavy resistance-trained women. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1990; 60: 71-9

62. Tesch PA. Skeletal-muscle adaptations consequent to long-term heavy resistance exercise. Med Sci Sports Exerc 1988; 20: S132-4

63. Thorstensson A, Hulten B, Dobeln WV, et al. Effect of strength training on enzyme-activities and fiber characteristics in human skeletal-muscle. Acta Physiol Scand 1976; 96: 392-8

64. Hakkinen K, Komi P, Tesch P. Effect of combined concentric and eccentric strength training and detraining on force-time, muscle fiber and metabolic characteristics of leg extensor muscles. Scand J Sports Sci 1981; 3: 50-8

65. Dons B, Bollerup K, Bondepetersen F, et al. Effect of weight- lifting exercise related to muscle-fiber composition and muscle cross-sectional area in humans. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1979; 40: 95-106

66. Houston ME, Froese EA, Valeriote SP, et al. Muscle performance, morphology and metabolic capacity during strength training and detraining: a one leg model. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1983; 51: 25-35

67. Goldspink G, Ward PS. Changes in rodent muscle-fiber types during postnatal-growth, undernutrition and exercise. J Physiol 1979; 296: 453-69

68. Frontera WR, Meredith CN, Oreilly KP, et al. Strength conditioning in older men: skeletal-muscle hypertrophy and improved function. J Appl Physiol 1988; 64: 1038-44

69. Fitts RH, McDonald KS, Schluter JM. The determinants of skeletal-muscle force and power: their adaptability with changes in activity pattern. J Biomech 1991; 24: 111-22

70. Stienen GJM, Kiers JL, Bottinelli R, et al. Myofibrillar ATPase activity in skinned human skeletal muscle fibres: fibre type and temperature dependence. J Physiol 1996; 493: 299-307

71. Bottinelli R, Pellegrino MA, Canepari M, et al. Specific contributions of various muscle fibre types to human muscle performance: an in vitro study. J Electromyogr Kinesiol 1999; 9: 87-95

72. Widrick JJ, Stelzer JE, Shoepe TC, et al. Functional properties of human muscle fibers after short-term resistance exercise training. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 2002; 283: R408-16

73. Nygaard E, Houston M, Suzuki Y, et al. Morphology of the brachial biceps muscle and elbow flexion in man. Acta Physiol Scand 1983; 117: 287-92

74. Maughan RJ, Nimmo MA. The influence of variations in muscle-fiber composition on muscle strength and cross-sectional area in untrained males. J Physiol 1984; 351: 299-311

75. Grindrod S, Round JM, Rutherford OM. Type-2 fiber composition and force per cross-sectional area in the human quadriceps. J Physiol 1987; 390: P154

76. Aagaard P, Andersen JL. Correlation between contractile strength and myosin heavy chain isoform composition in human skeletal muscle. Med Sci Sports Exerc 1998; 30: 1217-22

77. Gur H, Gransberg L, vanDyke D, et al. Relationship between in vivo muscle force at different speeds of isokinetic movements and myosin isoform expression in men and women. Eur J Appl Physiol 2003; 88: 487-96

78. MacDougall JD, Sale DG, Moroz JR, et al. Mitochondrial volume density in human skeletal-muscle following heavy renbsp;leg muscle mass and strength related to age in non-athlethicsistance training. Med Sci Sports Exerc 1979; 11: 164-6

79. Morkin E. Postnatal muscle fiber assembly: localization of newly synthesized myofibrillar proteins. Science 1970; 167: 1499-501

80. Goldspink G. The proliferation of myofibrils during muscle fibre growth. J Cell Sci 1970; 6: 593-603

81. Goldspink G. Changes in striated muscle fibres during contraction and growth with particular reference to myofibril splitting. J Cell Sci 1971; 9: 123-8

82. Goldspink G, Howells KF. Work-induced hypertrophy in exercised normal muscles of different ages and the reversibility of hypertrophy after cessation of exercise. J. Physiol. 1974; 239: 179-93

83. Goldspink G. Cellular and molecunbsp; lar aspects of adaptation in skeletal muscle. In: Komi PV, editor. Strength and power in sport. London: Blackwell Science, 1992: 211-229

84. Patterson S, Goldspink G. Mechanism of myofibril growth and proliferation in fish muscle. J Cell Sci 1976; 22: 607-16

85. Ashmore CR, Summers PJ. Stretch-induced growth in chicken wing muscles: myofibrillar proliferation. Am J Physiol 1981; 241: C93-7

86. Moss FP. The relationship between the dimensions of the fibres and the number of nuclei during restricted growth, degrowth and compensatory growth of skeletal muscle. J Anat 1968; 122: 555-63

87. Moss FP, Leblond CP. Satellite cells as the source of nuclei in muscles of growing rats. Anat Rec 1971; 170: 421-36

88. Burleigh IG. Observations on the number of nuclei within the fibres of some red and white muscles. J Cell Sci 1977; 23: 269-84

89. Eisenberg BR, Kennedy JM, Wenderoth MP, et al. Anonymous enlarge cellular and molecular biology of muscle development. New York: AR Liss, 1989: 460

90. Landing BH, Dixon LG, Wells TR. Studies on isolated human skeletal muscle fibers, including a proposed pattern of nuclear distribution anstrong/pd a concept of nuclear territories. Hum Pathol 1974; 5: 441-61

91. Schmalbruch H. Muscle regeneration: fetal myogenesis in a new setting. Bib Anat 1986; 29: 126-53

92. Allen RE, Merkel RA, Young RB. Cellular aspects of muscle growth: myogenic cell proliferation. J Anim Sci 1979; 49: 115-27

93. Bourke DL, Wylie SR, Theon A, et al. Myosin heavy chain expression following transfer into regenerating chicken muscle. Basic Appl Myol 1995; 5: 43-56

94. Allen DL, Monke SR, Talmadge RJ, et al. Plasticity of myonuclear number in hypertrophied and atrophied mammalian skeletal muscle fibers. J Appl Physiol 1995; 78: 1969-76

9nbsp;Physiol 1992; 73: 65-70p5. Rosenblatt JD, Parry DJ. Gamma irradiation prevents compensatory hypertrophy of overloaded mouse extensor digitorum longus muscle. J Appl Physiol 1992; 73: 2538-43

96. Rosenblatt JD, Parry DJ. Adaptation of rat extensor digitorum longus muscle to gamma irradiation and overload. Pflugers Arch 1993; 423: 255-64

97. Rosenblatt JD, Yong D, Parry DJ. Satellite cell activity is required for hypertrophy of overloaded adult rat muscle. Muscle Nerve 1994; 13. Roman WJ, Fleckenstein J, Straygundersen J, et al. Adaptations/p/p 17: 608-13

98. Kadi F, Eriksson A, Holmner S, et al. Cellular adaptation of the trapezius muscle in strength-trained athletes. Histochem Cell Biol 1999; 111: 189-95

99. Kadi F, Eriksson A, Holmner S, et al. Effects of anabolic steroids on the muscle cells of strength-trained athletes. Med Sci Sports Exerc 1999; 31: 1528-34

100. Kadi F, Thornell LE. Concomitant increases in myonuclear and satellite cell content in female trapezius muscle following strength training. Histochem Cell Biol 2000; 113: 99-103

101. Roth S, Martel G, Ivey F, et al. Skeletal muscle satellite cell characteristics in young and older men and women after heavy resistance strength training. J Gerontol. A p /pBio Sci 2001; 56: B240-7

102. Kadi F, Schjerling P, Andersen LL, et al. The effects of heavy resistance training and detraining on satellite cells in human skeletal muscles. J. Physiol 2004; 558: 1005-12

103. Crameri RM, Langberg H, Magnusson P, et al. Changes in satellite cells in human skeletal muscle after a single bout of high intensity exercise. J Physiol 2004; 558: 333-40

104. Hikida R, Staron R, Hagerman F, et al. Effects of high-intensity resistance training 24. Kadi F, Bonnerud P, Eriksson A, et al. The expression of 30. Hettinger T. Physiology of strength. Springfield (IL): CC on untrained older men: II. Muscle fiber characteristics and nucleo-cytoplasmic relationships. J Gerontol A Biol Sci Med Sci 2000; 55: B347-54

105. Sartorelli V, Fulco M. Molecular and cellular determinants of skeletal muscle atrophy and hypertrophy. Sci STKE 2004; 2004: re11

nbsp; /p 106. Reitsma W. Skeletal muscle hypertrophy after heavy exercise in rats with surgically reduced muscle function. Am J Phys Med 1969; 48: 237-58

107. Appell HJ. Muscular atrophy following immobilization: a re- view. Sports Med 1990; 10: 42-58

108. Edgerton VR. Morphology and histochemistry of the soleus muscle from normal and exercised rats. Am J Anat 1970; 127: 81-8

109. Carrow RE, Heusener WW, Van Huss D, et al. Exercise and the incidence of muscle fibre splitting. Br Assoc Sports Med 1973; 7: 39-41

110. Ho KW, Roy RR, Tweedle CD, et al. Skeletal muscle fiber splitting with weight-lifting exercise in rats. Am J Anat 1980; 157: 433-40

111. Gollnick PD, Timson BF, Moore RL, et al. Muscular enlargement and number of fibers in skeletal muscles of rats. J Appl Physiol 1981; 50: 936-43

112. Gonyea WJ, Sale DG, Gonyea FB, et al. Exercise induced increases in muscle fiber number. Eur J Appl Physiol 1986; 55: 137-41

113. Kelley G. Mechanical overload and skeletal muscle fiber hyperplasia: a meta-analysis. J Appl Physiol 1996; 81: 1584-8

114. Antonio J, Gonyea WJ. Skeletal muscle fiber hyperplasia. Med Sci Sports Exerc 1993; 25: 1333-45

115. Sjostrom M, Lexell J, Eriksson A, et al. Evidence of fibre hyperplasia in human skeletal muscles from healthy young men? A left-right comparison of the fibre number in whole anterior tibialis muscles. Eur J Appl Physiol 1991; 62: 301-4

116. Mauro M. Muscle regeneration. New York: Raven Press, 1979

117. Appell HJ, Forsberg S, Hollmann W. Satellite cell activation in human skeletal muscle after training: evidence for muscle fiber neoformation. Int J Sports Med 1988; 9: 297-9

118. Tesch PA, Larsson L. Muscle hypertrophy in bodybuilders. Eur J Appl Physiol 1982; 49: 301-6

119. Larsson L, Tesch PA. Motor unit fibre density in extremely hypertrophied skeletal muscles in man: electrophysiological signs of muscle fibre hyperplasia. Eur J Appl Physiol 1986; 55: 130-6

120. MacDougall JD, Sale DG, Elder GC, et al. Muscle ultrastruсtural characteristics of elite powerlifters and bodybuilders. Eur J Appl Physiol 1982; 48: 117-26

121. Bell DG, Jacobs I. Muscle fibre area, fibre type & capillarization in male and female body builders. Can J Sport Sci 1990; 15: 115-9

122. Alway SE, Grumbt WH, Gonyea WJ, et al. Contrasts in muscle and myofibers of elite male and female bodybuilders. J Appl Physiol 1989; 67: 24-31

123. McCall GE, Byrnes WC, Dickinson A, et al. Muscle fiber hypertrophy, hyperplasia, and capillary density in college men afppter resistance training. J Appl Physiol 1996; 81: 2004-12

124. MacDougall JD, Sale DG, Alway SE, et al. Muscle fiber number in biceps brachii in bodybuilders and control subjects. J Physiol 1984; 57: 1399-403

125. Burke RE, Kanda K, Mayer RF. The effect of chronic immobilisation on defined types of motor units in cat medial gastrocnemius. Science 1975; 174: 709-12

126. Walsh JV, Burke RE, Rymer WZ, et al. Effect of compensatory hypertrophy studied in individual motor units in medial gastrocnemius muscle of the cat. J Neurophysiol 1978; 41: 496-508

127. Haddad F, Qin AX, Zeng M, et al. Effects of isometric training on skeletal myosin heavy chain expression. J Appl Physiol 1998; 84: 2036-41

128. Hather BM, Tesch PA, Buchanan P, et al. Influence of eccentric actions on skeletal muscle adaptations to resistance training. Acta Physiol Scand 1991; 143: 177-85

129. Carroll TJ, Abernethy PJ, Logan PA, et al. Resistance training frequency: strength and myosin heavy chain responses to two and three bouts per week. Eur J Appl Physiol 1998; 78: 270-5

130. Schiaffino S, Gorza L, Sartore S, et al. Three myosin heavy chain isoforms in type 2 skeletal muscle fibres. J Muscle Res Cell Motil 1989; 10: 197-205

131. Andersen J, Aagaard P. Myosin heavy chain IIx overshoot in human skeletal muscle. Muscle Nerve 2000; 23: 1095-104

132. Williamson DL, Gallagher PM, Carroll CC, et al. Reduction in hybrid single muscle fiber proportions with resistance training in humans. J Appl Physiol 2001; 91: 1955-61

133. Andersen LL, Andersen JL, Magnusson SP, et al. Changes in the human muscle force-velocity relationship in response to resistance training and subsequent detraining. J Appl Physiol 2005; 99: 87-94

134. Claassen H, Gerber C, Hoppeler H, et al. Muscle filament spacing and short-term heavy-resistance exercise in humans. J Physiol 1989; 409: 491-5

135. Horber FF, Scheidegger JR, Gru¨nig BE, et al. Thigh muscle mass and function in patients treated with glucocorticoids. Eur J Clin Invest 1985; 15: 302-7

136. Jones DA, Rutherford OM. Human muscle strength training: the effects of three different regimens and the nature of the resultant changes. J Physiol 1987; 391: 1-11

137. Sipila¨ S, Suominen H. Effects of strength and endurance train- ing on thigh and leg muscle mass and composition in elderly women. J Appl Physiol 1995; 78: 334-40

138. Goldspink G. The combined effects of exercise and reduced food intake on skeletal muscle fibers. J Cell Comp Physiol 1964; 63: 209-19

139. Esmarck B, Andersen JL, Olsen S, et al. Timing of postexercise protein intake is important for muscle hypertrophy with resis- tance training in elderly humans. J Physiol 2001; 535: 301-11

140. Trappe S, Williamson D, Godard M, et al. Effect of resistance training on single muscle fiber contractile function in older men. J Appl Physiol 2000; 89: 143-52

141. Godard MP, Gallagher PM, Raue U, et al. Alterations in single muscle fiber calcium sensitivity with resistance training in older women. Pflugers Arch 2002; 444: 419-25

142. Shoepe TC, Stelzer JE, Garner DP, et al. Functional adaptability of muscle fibers to long-term resistance exercise. Med Sci Sports Exerc 2003; 35: 944-51

143. Street SF. Lateral transmission of tension in frog myofibers: a myofibrillar network and transverse cytoskeletal connections are possible transmitters. J Cell Physiol 1983; 114: 346-64

144. Goldberg AL, Etlinger JD, Goldspink DF, et al. Mechanism of work-induced hypertrophy of skeletal muscle. Med Sci Sports Exerc 1975; 7: 248-61

145. Huxley AF. Muscle structure and theories of contraction. Prog Biophysics Biophysical Chem 1957; 7: 255-318

146. Viidik A. Tensile strength properties of Achilles tendon systems in trained and untrained rabbits. Acta Orthop Scand 1969; 40: 261-72

147. Woo SL, Gomez MA, Amiel D, et al. The effects of exercise on coordinathe biomechanical and biochemical properties of swine digital flexor tendons. Biomech Eng 1981; 103: 51-6

148. Kubo K, Kanehisa H, Fukunaga T. Effects of different duration isometric contractions on tendon elasticity in human quadriceps muscles. J Physiol 2001; 536: 649-55

149. Kubo K, Kanehisa H, Fukunaga T. Effects of resistance and stretching training programmes on the viscoelastic properties of human tendon structures in vivo. J Physiol 2002; 538: 219-26

150. Reeves ND, Maganaris CN, Narici MV. Effect of strength training on human patella tendon mechanical properties of older individuals. J Physiol 2003; 548: 971-81

151. Bojsen-Møller J, Magnusson SP, Rasmussen LR, et al. Muscle performance during maximal isometric and dynamic contractions is influenced by the stiffness of the tendinous structures. J Appl Physiol 2005; 99: 986-94

152. Kongsgaard M, Aagaard P, Kjaer M, et al. Structural Achilles tendon properties in athletes subjected to different exercise modes and in Achilles tendon rupture patients. J Appl Physiol 2005; 99: 1965-71

153. Sommer HM. The biomechanical and metabolic effects of a running regime on the Achilles tendon in the rat. Int Orthop 1987; 11: 71-5

154. Birch HL, McLaughlin L, Smith RK, et al. Treadmill exercise- induced tendon hypertrophy: assessment of tendons with different mechanical functions. Equine Vet J Suppl 1999; 30: 222-6

155. Woo SL, Ritter MA, Amiel D, et al. The biomechanical and biochemical properties of swine tendons: long term effects of exercise on the digital extensors. Connect Tissue Res 1980; 7: 177-83

156. Wood TO, Cooke PH, Goodship AE. The effect of exercise and anabolic steroids on the mechanical properties and crimp morphology of the rat tendon. Am J Sports Med 1988; 16: 153-8

157. Michna H, Hartmann G. Adaptation of tendon collagen to exercise. Int Orthop 1989; 13: 161-5

158. Alexander RM, Vernon A. The dimensions of the knee and ankle muscles and the forces they exert. J Hum Movt Stud 1975; 1: 115-23

159. Kawakami Y, Abe T, Fukunaga T. Muscle-fiber pennation angles are greater in hypertrophied than in normal muscles. J Appl Physiol 1993; 74: 2740-4

160. Ichinose Y, Kanehisa H, Ito M, et al. Relationship between muscle fiber pennation and force generation capability in olympic athletes. Int J Sports Med 1998; 19: 541-6

161. Abe T, Brechue WF, Fujita S, et al. Gender differences in FFM accumulation and architectural characteristics of muscle. Med Sci Sports Exerc 1998; 30: 1066-70

162. Rutherford OM, Jones DA. Measurement of fibre pennation using ultrasound in the human quadriceps in vivo. Eur J Appl Physiol 1992; 65: 433-7

163. Kanehisa H, Nagareda H, Kawakami Y, et al. Effects of equivolume isometric training programs comprising medium or high resistance on muscle size and strength. Eur J Appl Physiol 2002; 87: 112-9

164. Kawakami Y, Abe T, Kuno SY, et al. Training-induced changes in muscle architecture and specific tension. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1995; 72: 37-43

165. Reeves ND, Narici MV, Maganaris CN. Effect of resistance training on skeletal muscle-specific force in elderly humans. J Appl Physiol 2004; 96: 885-92

166. Sale DG, MacDougall JD, Upton AR, et al. Effect of strength training upon motoneuron excitability in man. Med Sci Sports Exerc 1983; 15: 57-62

167. Gandevia SC. Spinal and supraspinal factors in human muscle fatigue. Physiol Rev 2001; 81: 1725-89

168. Rutherford OM, Jones DA. The role of learning and coordination in strength training. Eur J Appl Physiol 1986; 55: 100-5

169. Horak FB, Macpherson JM. Postural orientation and equilibrium. In: Rowell LB, Shepherd JT, editors. Handbook of physiology: section 12 exercise: regulation and integration of multiple systems. New York: Oxford University Press, 1996: 292

170. Wilson GJ, Murphy AJ, Walshe A. The specificity of strength training: the effect of posture. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1996; 73: 346-52

171. Nozaki D, Nakazawa K, Akai M. Uncertainty of knee joint muscle activity during knee joint torque exertion: the significance of controlling adjacent joint torque. J Appl Physiol 2005; 99: 1093-103

172. Komi PV, Viitasalo JT, Rauramaa R, et al. Effect of isometric strength training of mechanical, electrical, and metabolic aspects of muscle function. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1978; 40: 45-55

173. Moritani T, deVries HA. Neural factors versus hypertrophy in the time course of muscle strength gain. Am J Phys Med 1979; 58: 115-30

174. Patten C, Kamen G, Rowland D. Adaptations in maximal motor unit discharge rate to strength training in young and older adults. Muscle Nerve 2001; 24: 542-50

175. Zhou S. Chronic neural adaptations to unilateral exercise: mechanisms of cross education. Exerc Sport Sci Rev 2000; 28: 177-84

176. Sale DG. Neural adaptation to resistance training. Med Sci Sports Exerc 1988; 20: S135-45

177. Davies J, Parker DF, Rutherford OM, et al. Changes in strength and cross sectional area of the elbow flexors as a result of isometric strength training. Eur J Appl Physiol 1988; 57: 667-70

178. Young A, Stokes M, Round JM, et al. The effect of high- resistance training on the strength and cross-sectional area of the human quadriceps. Eur J Clin Invest 1983; 13: 411-7

179. Hortobagyi T, Scott K, Lambert J, et al. Cross-education of muscle strength is greater with stimulated than voluntary con- tractions. Motor Control 1999; 3: 205-19

180. Farthing JP, Chilibeck PD. The effect of eccentric training at different velocities on cross-education. Eur J Appl Physiol 2003; 89: 570-7

181. Seger JY, Thorstensson A. Effects of eccentric versus concentric training on thigh muscle strength and EMG. Int J Sports Med 2005; 26: 45-52

182. Shima N, Ishida K, Katayama K, et al. Cross education of muscular strength during unilateral resistance training and detraining. Eur J Appl Physiol 2002; 86: 287-94

183. Yue G, Cole KJ. Strength increases from the motor program: comparison of training with maximal voluntary and imagined muscle contractions. J Neurophysiol 1992; 67: 1114-23

184. Zijdewind I, Toering ST, Bessem B, et al. Effects of imagery motor training on torque production of ankle plantar flexor muscles. Muscle Nerve 2003; 28: 168-73

185. Sidaway B, Trzaska AR. Can mental practice increase ankle dorsiflexor torque? Phys Ther 2005; 85: 1053-60

186. Herbert RD, Dean C, Gandevia SC. Effects of real and imagined training on voluntary muscle activation during maximal isometric contractions. Acta Physiol Scand 1998; 163: 361-8

187. Behm DG, Whittle J, Button D, et al. Intermuscle differences in activation. Muscle Nerve 2002; 25: 236-43

188. Westing SH, Seger JY, Karlson E, et al. Eccentric and concentric torque-velocity characteristics of the quadriceps femoris in man. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1988; 58: 100-4

189. Dudley GA, Harris RT, Duvoisin MR, et al. Effect of voluntary vs artificial activation on the relationship of muscle torque to speed. J Appl Physiol 1990; 69: 2215-21

190. Hakkinen K, Komi PV. Electromyographic changes during strength training and detraining. Med Sci Sports Exerc 1983; 15: 455-60

191. Reeves ND, Maganaris CN, Narici MV. Plasticity of dynamic muscle performance with strength training in elderly humans. Muscle Nerve 2005; 31: 355-64

192. Weir JP, Housh DJ, Housh TJ, et al. The effect of unilateral eccentric weight training and detraining on joint angle specificity, cross-training, and the bilateral deficit. J Orthop Sports Phys Ther 1995; 22: 207-15

193. Aagaard P, Simonsen E, Andersen J, et al. Increased rate of force development and neural drive of human skeletal muscle following resistance training. J Appl Physiol 2002; 93: 1318-26

194. Holtermann A, Roeleveld K, Vereijken B, et al. Changes in agonist EMG activation level during MVC cannot explain early strength improvement. Eur J Appl Physiol 2005; 94: 593-601

195. Hicks AL, Cupido CM, Martin J, et al. Muscle excitation in elderly adults: the effects of training. Muscle Nerve 1992; 15: 87-93

196. Medbø JI, Jebens E, Vikne H, et al. Effect of strenuous strength training on the Na-K pump concentration in skeletal muscle of well-trained men. Eur J Appl Physiol 2001; 84: 148-54

197. Dela F, Holten M, Juel C. Effect of resistance training on Na-K pump and Na+/H+ exchange protein densities in muscle from control and patients with type 2 diabetes. Pflugers Arch 2004; 447: 928-33

198. Fuentes I, Cobos AR, Segade LA. Muscle fibre types and their distribution in the biceps and triceps brachii of the rat and rabbit. J Anat 1998; 192: 203-10

199. Duchateau J, Hainaut K. Isometric or dynamic training: differential effects on mechanical properties of a human muscle. J Appl Physiol 1984; 56: 296-301

200. Van Cutsem M, Duchateau J, Hainaut K. Changes in single motor unit behaviour contribute to the increase in contraction speed after dynamic training in humans. J Physiol 1998; 513: 295-305

201. Rich C, Cafarelli E. Submaximal motor unit firing rates after 8 wk of isometric resistance training. Med Sci Sports Exerc 2000; 32: 190-6

202. Bigland B, Lippold OC. Motor unit activity in the voluntary contraction of human muscle. J Physiol 1954; 125: 322-35

203. Bigland-Ritchie B, Johansson R, Lippold OC, et al. Contractile speed and EMG changes during fatigue of sustained maximal voluntary contractions. J Neurophysiol 1983; 50: 313-24

204. Grimby L, Hannerz J, Hedman B. The fatigue and voluntary discharge properties of single motor units in man. J Physiol 1981; 316: 545-54

205. Lyle N, Rutherford OM. A comparison of voluntary versus stimulated strength training of the human adductor pollicis muscle. J Sports Sci 1998; 16: 267-70

206. McDonagh MJ, Hayward CM, Davies CT. Isometric training in human elbow flexor muscles: the effects on voluntary and electrically evoked forces. J Bone Joint Surg Br 1983; 65: 355-8

207. Davies CT, Dooley P, McDonagh MJ, et al. Adaptation of mechanical properties of muscle to high force training in man. J Physiol 1985; 365: 277-84

208. Maffiuletti NA, Cometti G, Amiridis IG, et al. The effects of electromyostimulation training and basketball practice on muscle strength and jumping ability. Int J Sports Med 2000; 21: 437-43

209. Colson S, Martin A, Van Hoecke J. Re-examination of training effects by electrostimulation in the human elbow musculoskeletal system. Int J Sports Med 2000; 21: 281-8

210. Zhou S, Oakman A, Davie A. Effects of unilateral voluntary and electromyostimulation training on muscular strength of the contralateral limb. Hong Kong J Sports Med Sports Sci 2002; 14: 1-11

211. Lieber RL, Silva PD, Daniel DM. Equal effectiveness of electrical and volitional strength training for quadriceps femoris muscles after anterior cruciate ligament surgery. J Orthop Res 1996; 14: 131-8

212. Ruther CL, Golden CL, Harris RT, et al. Hypertrophy, resistance training, and the nature of skeletal muscle activation. J Strength Cond Res 1995; 9: 155-9

213. Merton PA. Voluntary strength and fatigue. J Physiol 1954; 123: 553-64

214. Belanger AY, McComas AJ. Extent of motor unit activation during effort. J Appl Physiol 1981; 51: 1131-5

215. Rutherford OM, Jones DA, Newham DJ. Clinical and experiagonist mental application of the percutaneous twitch superimposition technique for the study of human muscle activation. J Neurol Neurosurg Psychiatry 1986; 49: 1248-91

216. Folland J, Williams A. Methodological issues with the interpoelderly lated twitch technique. J Electromyog Kinesiol. Epub 2006 Jun 22

217. Shield A, Zhou S. Assessing voluntary muscle activation with the twitch interpolation technique. Sports Med 2004; 34: 253-67

218. Nørregaard J, B¨ulow PM, Danneskiold-Samsøe B. Muscle strength, voluntary activation, twitch properties, and endurcontrol ance in patients with fibromyalgia. J Neurol Neurosurg Psychiatry 1994; 57: 1106-11

219. Jakobi JM, Cafarelli E. Neuromuscular drive and force production are not altered during bilateral contractions. J Appl Physiol 1998; 84: 200-6

220. Roos MR, Rice CL, Connelly DM, et al. Quadriceps muscle strength, contractile properties, and motor unit firing rates in young and old men. Muscle Nerve 1999; 22: 1094-103

221. Kalmar JM, Cafarelli E. Effects of caffeine on neuromuscular function. J Appl Physiol 1999; 87: 801-8 as

222. Brown AB, McCartney N, Sale DG. Positive adaptations to weight-lifting training in the elderly. J Appl Physiol 1990; 69: 1725-33

223. Scaglioni G, Ferri A, Minetti A, et al. Plantar flexor activation capacity and H reflex in older adults: adaptations to strength training. J Appl Physiol 2002; 92: 2292-302

224. Knight C, Kamen G. Adaptations in muscular activation of the knee extensor muscles with strength training in young and older adults. J Electromyogr Kinesiol 2001; 11: 405-12

225. Becker R, Awiszus F. Physiological alterations of maximal voluntary quadriceps activation by changes of knee joint angle. Muscle Nerve 2001; 24: 667-72

226. Kubo K, Tsunoda N, Kanehisa H, et al. Activation of agonist and antagonist muscles at different joint angles during maxi- mal isometric efforts. Eur J Appl Physiol 2004; 91: 349-52

227. Babault N, Pousson M, Ballay Y, et al. Activation of human quadriceps femoris during isometric, concentric, and eccentric contractions. J Appl Physiol 2001; 91: 2628-34

228. Perrine JJ, Edgerton VR. Muscle force-velocity and power- velocity relationships under isokinetic loading. Med Sci Sports 1978; 10: 159-66

229. Caiozzo VJ, Perrine JJ, Edgerton VR. Training-induced alterations of the in vivo force-velocity relationship of human muscle. J Appl Physiol 1981; 51: 750-4

230. Newham DJ, McCarthy T, Turner J. Voluntary activation of human quadriceps during and after isokinetic exercise. J Appl Physiol 1991; 71: 2122-6

231. Gandevia SC, Herbert RD, Leeper JB. Voluntary activation of human elbow flexor muscles during maximal concentric contractions. J Physiol 1998; 512: 595-602

232. Amiridis IG, Martin A, Morlon B, et al. Co-activation and tension-regulating phenomena during isokinetic knee extension in sedentary and highly skilled humans. Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1996; 73: 149-56

233. Hortobagyi T, Lambert NJ. Influence of electrical stimulation on dynamic forces of the arm flexors in strength-trained and untrained men. Scand J Med Sci Sports 1992; 2: 70-5

234. Westing SH, Seger JY, Thorstensson A. Effects of electrical stimulation on eccentric and concentric torque-velocity relationships during knee extension in man. Acta Physiol Scand 1990; 140: 17-22

235. Hortob´agyi T, Hill JP, Houmard JA, et al. Adaptive responses to muscle lengthening and shortening in humans. J Appl Physiol 1996; 80: 765-72

236. Kukulka CG, Clamann HP. Comparison of the recruitment and discharge properties of motor units in human brachial biceps and adductor pollicis during isometric contractions. Brain Res 1981; 219: 45-55

237. De Luca CJ, LeFever RS, McCue MP, et al. Behaviour of human motor units in different muscles during linearly varying contractions. J Physiol 1982; 329: 113-28

238. Solomonow M, Baten C, Smit J, et al. Electromyogram power spectra frequencies associated with motor unit recruitment strategies. J Appl Physiol 1990; 68: 1177-85

239. Monster AW, Chan H. Isometric force production by motor units of extensor digitorum communis muscle in man. J Neurophysiol 1977; 40: 1432-43

240. Bellemare F, Woods JJ, Johansson R, et al. Motor-unit distion charge rates in maximal voluntary contractions of three human muscles. J Neurophysiol 1983; 50: 1380-92

241. Thomas CK, Bigland-Richie B, Johansson RS. Force-frequency relationships of human thenar motor units. J Neurophysiol 1991; 65: 1509-16

242. Macefield VG, Fuglevand AJ, Bigland-Ritchie B. Contractile properties of single motor units in human toe extensors assessed by intraneural motor axon stimulation. J Neurophysiol 1996; 75: 2509-19

243. Binder-Macleod SA, Barker CB. Use of a catch-like property of human skeletal muscle to reduce fatigue. Muscle Nerve 1991; 14: 850-7

244. Duchateau J, Hainaut K. Nonlinear summation of contractions in striated muscle: I. Twitch potentiation in human muscle. J Muscle Res Cell Motil 1986; 7: 11-7