Обработка трахеотомической трубки

Показание: предупреждение асфиксии из-за закупорки вязким секретом трахеотомической трубки.

Оснащение: стерильный катетер, стерильный ра­створ фурациллина 1:5000, электроотсос, стерильные пипетки, резиновые перчатки, емкость с дезинфицирующим раствором.

Последовательность действий:

1. Надеть резиновые перчатки.

2. Подсоединить катетер к системе электроотсоса.

3. Повернуть голову пациента в сторону, противоположную направлению клюва катетера.

4. Включить электроотсос.

5. Удалить из трахеи после отсасывания слизи внут­реннюю трубку трахеотомической канюли.

6. Смазать стерильной салфеткой, пропитанной сте­рильным вазелиновым маслом, приготовленную стериль­ную внутреннюю трубку трахеотомической канюли.

7. Ввести в наружную трахеотомическую канюлю внутреннюю трубку соответствующего размера, зафик­сировать замком (металлическую трубку меняют 3 раза в сутки, пластиковую трубку — 1 раз в сутки).

8. Обработать кожу и швы вокруг канюли шариками, смоченными 1% раствором йодоната, а затем пастой Лассара.

9. Разрезать салфетку до середины с одной стороны и завести под щиток канюли разрезанными концами (ме­нять салфетки по мере промокания).

10. Закрыть трахеотомическое отверстие канюли
влажной марлевой салфеткой в виде «фартушка», смо­ченной 0,9% раствором хлорида натрия для предупреждения высыхания слизистой оболочки (смачивать по мере высыхания)

11. Поместить в емкость с дезраствором использо­ванные предметы медицинского назначения.

Примечание. Для предупреждения высыхания слизи­стой оболочки трахеи, в трахею вливают 2-3 капля стерильного вазелинового масла или глицерина.

 

 

83. Продемонстрировать биологическую пробу на совместимость крови донора и реципиента.

БИОЛОГИЧЕСКАЯ ПРОБА

 

Показания для постановки биологической пробы:

• переливание цельной крови;

• переливание компонентов крови: эритроцитарной массы, лейко­цитарной массы, плазмы;

• переливание препаратов крови: альбумина, протеина;

• переливание кровезаменителей: полиглюкина, реополиглюкина, жировых эмульсий, белковых препаратов.

Техника постановки биологической пробы:

1. Внутривенно струйно перелить 10-15 мл трансфузионной среды.

2. Перекрыть зажим капельницы.

3. Наблюдать за состоянием пациента 3 минуты.

4. При отсутствии таких реакций или осложнений, как учащение пульса, дыхания, затруднение дыхания, гиперемия лица, боли в поясни­це, вновь перелить 10-15 мл трансфузионной среды и снова 3 минуты наблюдать за состоянием пациента. Таким образом провести три про­бных вливания по 10-15 мл трансфузионной среды с остановками по 3 минуты.

5. Отсутствие реакций у пациента после трехкратной проверки явля­ется признаком совместимости вливаемой крови и служит основанием для осуществления всей трансфузии.

6. При появлении перечисленных выше реакций кровь является био­логически несовместимой, ее переливание прекращается. Контейнер с кровью хранится 24 часа в холодильнике при t = 4°С.

Примечание. Бели пациент находится под наркозом, биологи­ческую совместимость крови донора и реципиента определяют следу­ющим образом: проводят пробу на скрытый гемолиз. Сначала пациенту переливают первые 100 мл трансфузионной среды (из каждого контейнера), затем берут 5 мл крови из локтевой вены в сухую маркированную пробирку, добавляют гепарин и центрифугируют. Оценка:

• Розовая окраска плазмы говорит о гемолизе. Значит, перелита не­совместимая кровь.

Если плазма нормально окрашена, то переливают оставшуюся дозу.

 

 

84. Продемонстрировать на фантоме обработку предплечья после химического ожога кислотой.

 

Химические ожоги

Химические ожоги появляются при попадании на кожу и слизистые концентрированных кислот (азотной, серной, соляной, уксусной).

Оснащение:

• стерильный лоток;

• резиновые перчатки;

• перевязочный материал;

• пинцеты;

• ножницы;

• шприц с инъекционной иглой;

• раствор антисептика;

• 2% раствор бикарбоната натрия;

• 70° этиловый спирт;

Последовательность действий:

1. Прекратить действие поражающего фактора.

2. Освободить участок с ожогом от одежды.

3. Ожоговую поверхность промыть холодной водой в течение 15 минут.

4. Провести обезболивание (дать таблетку анальгина или ввести 50% раствор анальгина 2-5 мл внутримышечно).

5. Нейтрализовать остатки кислоты 2% раствором бикарбоната натрия смоченной салфеткой помещенной на рану на 5 минут.

6. Снять салфетку и наложить на рану асептическую повязку (0,02% раствор хлоргексидина, суспензию с анестезином) или обработать рану.

7. Провести иммобилизацию конечности шиной или косыночной повязкой.

8. Наложить на место ожога пузырь со льдом.

9. Госпитализировать в травматологическое отделение.

10.ПриII—IV степени ожога решить вопрос о профилактике столбняка.

 

 

85. Продемонстрировать пробу на совместимость крови донора и реципиента по резус-фактору.

ПРОБА НА ИНДИВИДУАЛЬНУЮ СОВМЕСТИМОСТЬ ПО РЕЗУС-ФАКТОРУ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ 33% РАСТВОРА ПОЛИГЛЮКИНА

 

Материальное обеспечение:

• чистая центрифужная пробирка 10 мл;

• пробирка с сывороткой реципиента;

• контейнер с кровью донора;

• флакон с 33% раствором полиглюкина;

• пипетки — 3;

• песочные часы на 5 минут;

• перчатки;

• стеклограф.

Техника проведения пробы:

1. Промаркировать пробирку (написать на нем фамилию, инициалы и группу крови донора и реципиента и номер контейнера с кровью).

2. Надеть перчатки.

3. На дно чистой пробирки нанести 2 капли сыворотки крови реципи­ента, одну каплю крови донора, одну каплю 33% раствора полиглюкина.

4. Перемешать содержимое пробирки: наклонять пробирку, медлен­но поворачивать так, чтобы ее содержимое растекалось по стенкам. Пробирку не встряхивать! Перевернуть песочные часы.

5. Наблюдать в течение 5 минут. Температура 15-20°С в комнате.

6. Через 5 минут в пробирку налить 2-3 мл изотонического раствора натрия хлорида. Перемешать содержимое путем 2-3-кратного перевора­чивания пробирки.

7. Оценка результатов:

• Содержимое пробирки остается гомогенно окрашенным без признаков агглютинации эритроцитов — кровь донора совместима скровью реципиента по резус-фактору.

8. В пробирке на фоне просветленной или полностью обесцвеченной жидкости наступила агглютинация эритроцитов. Это значит, что кровь донора несовместима с кровью реципиента и не может быть ему перелита.

9. Снять перчатки. Вымыть руки.

 

 

86. Продемонстрировать проведение искусственной вентиляции легких мешком «Амбу» на фантоме.

 

Общие правила ИВЛ

1. Объём вдувания должен быть около 1 л, частота примерно 12 раз в мин. Во вдуваемом воздухе содержится 15—17% кислорода и 2-4% СО₂, чего вполне достаточно, учитывая и воздух мёртвого про­странства, близкий по составу к атмосферному.

2. Выдох должен длиться не меньше 1,5—2 с. Увеличение продол­жительности выдоха повышает его эффективность. Кроме того, уменьшается возможность расширения желудка, что может привести к регургитации и аспирации.

3. Во время ИВЛ следует постоянно контролировать проходимость дыхательных путей.

4. Для профилактики инфекционных осложнений у реанимирующего можно использовать салфетку, носовой платок и др.

Главный критерий эффективности ИВЛ: расширение грудной клетки при вдувании воздуха и её спадение при пассивном выдохе.

5. Подобная ИВЛ крайне утомительна для реанимирующего, по­этому как можно раньше целесообразно перейти на ИВЛ с использованием простейших аппаратов типа «Амбу», что также повышает эффективность ИВЛ.

 

87. Продемонстрировать уход за спицей при скелетном вытяжении.

 

 

Своевременно проводится профилактика инфицирования мягких тканей и кости в том месте, где сквозь них проходит спица. Эту область ежедневно обрабатывают спиртовым 0,02% раствором хлоргексидина, а затем накладывается такая же повязка с этим же раствором и фиксируется лейкопластырем к коже.

 

Рис. Положение пациента в постели при переломе в области бедра при скелетном вытяжении

 

 

88. Собрать набор инструментов для катетеризации мочевого пузыря у женщины и провести ее.