Змащують внутрішню поверхню камери штучної вагіни з метою слизнення гумової камери штучної вагіни

Змащують ебонітовий краник.

103. Кріобіологічний посуд за кімнатної температури перед стерилізацією витримують:

Не менше трьох діб.

Дві години.

Не менше двох діб.

Не менше 10 діб.

104. Проводять знезараження кріобіологічного посуду:

Через 5 років.

Через 10 років.

1 раз в рік.

1 раз в 6 місяців.

105. Для приготування 200 мл 1%-ного розчину натрію гідрокарбонату потрібно:

199 мл дистильованої води і 1 г натрію гідрокарбонату.

198 мл дистильованої води і 2 г натрію гідрокарбонату.

197 мл дистильованої води і 3 г натрію гідрокарбонату.

200 мл дистильованої води і 5 г натрію гідрокарбонату

106. Термін зберігання свіжеприготовленого 1% розчину натрію гідрокарбонату, це:

Одна доба.

Один тиждень.

Один місяць.

60 діб.

107. Для приготування одного літра 0,85% розчину натрію хлориду потрібно:

0,85 г натрію хлориду і долити до 1 л дистильованою водою.

8,5 г натрію хлориду і долити до 1 л дистильованою водою.+

5 г натрію хлориду і долити до 1 л дистильованою водою.

10 г натрію хлориду і долити до 1 л дистильованою водою.

108. 2,9%-й розчин натрію цитрату знезаражують:

У водяній бані за температури 90°С протягом 10 хв.

Кип’ятінням.

Додають на 100 мл три краплі 3 % спиртового розчину йоду.

Додають на 100 мл десять крапель 3 % спиртового розчину йоду

109. Стерилізують кип’ятінням:

1% розчин натрію гідрокарбонату.

0,9% розчин натрію хлориду.

2,9% розчин натрію цитрату.

3,5% розчин натрію цитрату.

110. 2,9% розчин натрію цитрату використовують з метою:

Довготривалого зберігання сперми.

Відтаювання сперми.

Стерилізації інструментів.

Знезаражування інструментів.

111. Визначають концентрацію спирту:

За допомогою спиртометра.

За допомогою зважування.

За допомогою спалювання.

За допомогою жирометра.

112. Для знезараження піхвових дзеркал використовують:

70% спирт.

Перманганат калію у розведенні 1:1000.

4% розчин каустичної соди.

96 % спирт.

113. Використовують розчин фурациліну під час осіменіння корів у концентраціях:

1:5000.

1:10000.

1:100.

1: 200.

114. Використовують розчин фурациліну під час штучного осіменіння:

Для розморожування і розрідження сперми.

Для санації піхви перед введенням сперми.

Для обробки зовнішніх статевих органів перед введенням сперми.

Для обробки внутрішніх статевих органів перед введенням сперми.

115. Для санітарного оброблення кріобіологічного посуду використовують:

70% етиловий спирт.

2-3% розчин натрію гідрокарбонату.

3% спиртовий розчин йоду.

96 % етиловий спирт.

116. Приготування хромової суміші:

До 9,2 г калію двохромовокислого додають 100 мл концентрованої сірчаної кислоти.

1 г калію двохромовокислого розчиняють у 100 мл 40% азотної кислоти.

1 г калію двохромовокислого розчиняють у 100 мл 40% молочної кислоти.

1 г калію двохромовокислого розчиняють у 120 мл 30% молочної кислоти.

117. Хромову суміш застосовують для:

Прання халатів і рушників.

Відмивання забрудненого білком і спермою скляного посуду.

Відмивання піхвових дзеркал від залишків вазеліну чи бруду.

Знезаражування інструментів.

118. Фільтрувальний папір стерилізують:

За допомогою гарячої праски.

Просочують хромовою сумішшю.

Просочують 3% розчином каустичної соди.

Просочують 70% етиловим спиртом.

119. Вкажіть послідовність виготовлення паперових фільтрів:

Вирізають чотирикутник відповідно до розмірів лійки, складають за діагоналлю так, щоб утворився трикутник.

Вирізають трикутник відповідно до розмірів лійки.

Вирізають чотирикутник відповідно до розмірів лійки, складають за діагоналлю так, щоб утворився трикутник і верхівку трикутника зрізають, для кращого проходження рідини.

Вирізають восьмикутник відповідно до розмірів лійки, складають за діагоналлю.

 

120. Для виготовлення тампонів необхідні матеріали:

Біла гігроскопічна вата і марля.

Фільтрувальний папір.

Негігроскопічна вата.

Стерильні ножиці.

121. Тампони для знезараження штучних вагін зволожують:

70% спиртом.

Рідким азотом.

Ізотонічним розчином натрію хлориду.

0,02 % розчином фурациліну.

122. Сухі ватно-марлеві тампони знезаражують:

3%-им спиртовим розчином йоду.

У сушильній шафі за температури 130°С 60 хвилин.

0,02 % розчином фурациліну.

Рідким азотом

123. Марлеві серветки використовують:

Для виймання гранул з посудин Дьюара.

Для фламбування приладів.

Для витирання приладів та інструментів від залишків вазеліну, фізіологічного розчину тощо.

Для знезаражування інструментів.

124. Стерилізують марлеві серветки:

За допомогою гарячої праски.

3 %-м спиртовим розчином йоду.

3 %-м розчином перекису водню.

3%-м розчином каустичної соди.

125. Чи можна 1% розчин натрію гідрокарбонату нагрівати вище 60°С?

Не можна, тому що він перетворюється у натрію карбонат і стає токсичним для сперміїв.

Можна, так як його стерилізують кип’ятінням.

Можна, тільки у скляному посуді.

Можна, тільки в емальованому посуді.

126. Штучна вагіна для взяття сперми в бугая, кнура, жеребця і барана має будову:

Тубус, гумова камера, спермоприймач.

Зонд довжиною 25 см з двома електродами на кінці та блок живлення.

Шкіряний чохол діаметром 5 см та довжиною 40 см.

Шкіряний чохол діаметром 10 см та довжиною 50 см.

127. Методи знезаражування штучної вагіни:

Фламбування.

Ультрафіолетове опромінення.

Автоклавування, кип’ятіння у дистильованій воді, використання 70 % спирту-ректифікату.

Фільтрування, сушіння.

128. Нагнітання повітря в штучну вагіну проводиться:

За допомогою компресора або куль Річардсона до стискування стінок камери.

Вливанням через патрубок 500 мл води.

Закриванням патрубка і підігріванням штучної вагіни до температури 60–70 °С.

За допомогою ебонітового краника.

129. Робоча температура у вагіні:

40–42 °С.

36–38,5 °С

55–70 °С

. 60–65 °С.

130. Відносять до хірургічних методів отримання сперми:

Масажу ампулоподібних розширень сім’япроводів, електроеякуляції.

Мастурбації, спермозбирача.

. Отримання сперми після кастрації чи забою тварини, аспірації сперміїв з придатка сім’яника.

Використання спермоприймача.

131. Для одержання сперми використовують метод мастурбації у самців:

Собак та хутрових звірів.

Бугаїв.

Жеребців.

Баранів.

132. Методи, які полягають в одержанні еякуляту із піхви самки після статевого акту з плідником:

Уретральні.

Хірургічні.

Піхвові.

Гінекологічні.

133. Методи одержання сперми відносять до уретральних:

Піхвові.

Хірургічні.

Метод мастурбації, спермозбирача, масажу ампулоподібних розширень сім’япроводів, електроеякуляції, фістульний та штучної вагіни.

Гінекологічні.

134. Метод, яким одержують сперму в бугаїв із хворими кінцівками, неповноцінними та збоченими статевими рефлексами:

Методом спермозбирача.

Методом масажу ампул с ім’япроводів.

Фістульним методом.

Методом штучної вагіни.

135. Для отримання сперми в бугаїв частіше використовують метод:

Метод штучної вагіни.

Метод мастурбації.

Метод кастрації самця.

Фістульний метод.

136. Використовують метод масажу ампулоподібних розширень сім’япроводів для одержання сперми яких тварин:

Баранів і козлів.

Бугаїв.

Кобелів.

Жеребців.

137. Одержують сперму у кнура:

Методом електроеякуляції.

Методом спермозбирача.

Методом штучної вагіни.

Фістульним методом.

138. Методи дослідження якості сперми, які є обов’язковими на пунктах штучного осіменіння:

Визначення рухливості.

Визначення відсотка живих і мертвих сперміїв.

Визначення концентрації сперміїв.

Визначення стерильності сперміїв.

139. Нормальний об’єм еякуляту у бугая:

50-100 мл

1–2 мл

Мл

5-10 мл.

140. Сперму вважають густою:

Коли в полі зору мікроскопа між сперміями майже немає проміжків.

Коли проміжки між сперміями добре виражені.

Коли проміжки між сперміями перевищують довжину спермія.

Коли проміжки між сперміями не перевищують довжину спермія.

141. Використовують для визначення відсотка живих і мертвих сперміїв у спермі жеребця фарбу:

Конго-рот.

Еозин.

Метиленовий синій.

Гематоксилін.

142. Використовують для визначення інтенсивності дихання сперміїв фарбу:

Конго-рот.

Еозин.

Метиленовий синій.

Гематоксилін.

143. Концентрація сперми, це:

Кількість статевих клітин в 1 мл сперми.

Кількість сперміїв з ППР в еякуляті.

Кількість живих сперміїв в еякуляті.

Кількість статевих клітин в 3 мл сперми

144. Визначають виживаність сперміїв:

Одразу після отримання сперми.

Перед заморожуванням сперми.

Після певного строку зберігання.

Після 10 діб зберігання.

145. Розріджують сперму з метою:

Щоб збільшити об’єм сперми та підтримати запліднювальну здатність протягом терміну зберігання.

Щоб краще транспортувалася у статевих органах самки.

Щоб підвищити заплідненість самок.

Щоб підвищити дозрівання фолікулів.

146. Розводять сперму кнура:

У 2–10 разів.

У 50 разів.

У 20 разів.

У 30 разів.

147. Компоненти середовищ для розрідження сперми, які підвищують стійкість сперміїв до швидкого охолодження та зберігання:

Лактоза, цитрат натрію.

Бідистильована вода, молоко.

Лецитин, жовток курячого яйця.

0,2 -0,3 % розчин перманганату калію.

 

148. Час збереження розрідженої сперми кнура за температури +18–20 °С, це:

До 24 год.

72 год.

До 60 діб.

До 30 діб.

149. Еквілібрація, це:

Вирівнювання концентрацій осмотично-активних речовин і гліцерину між розріджувачем та плазмою сперміїв.

Процес осідання сперміїв після розрідження сперми.

Насичення розрідженої сперми вуглекислим газом.

Насичення розрідженої сперми перманганатом калію.

150. Використовують для приготування середовищ для розрідження спермии воду:

Бідистильовану.

Артезіанську.

Мінеральну, з високим вмістом гідрокарбонатів.

Дистильовану.

151. Оптимальним часом для введення сперми самкам сільськогосподарських тварин є феномен стадії збудження:

Статевої охоти, як позитивної реакції самки на самця.

Анафродизії.

Овуляції.

Спокую.

152. Метод, яким одночасно виявляють статеву охоту і діагностують вагітність:

Трансректальним дослідженням внутрішніх органів.

Самцем пробником.

Оглядом, пальпацією і аускультацією.

Дослідженням зовнішніх органів.

153. Методи виявлення оптимального часу для введення сперми, це:

За вмістом еритроцитів, лейкоцитів і макро- та мікроелементів у крові.

Рефлексологічний, клініко-візуальний, за ступенем зрілості фолікула, енергометрії, за допомогою собак, електрометричні.

На штучну вагіну, спермозбирача, фістульний, масажу ампул.

154. Методи, які найчастіше використовуються для визначення оптимального часу осіменіння корів, кобил, свиней, овець, кіз, сук:

У корів, свиней, кіз, сук – клінічно-візуальний, у кобил, овець, кіз – пробника.

У корів, кобил, свиней, овець, кіз, сук – за вмістом естрального слизу.

У корів, кобил, свиней – на штучну вагіну, а в овець, кіз, сук – трансректальний.

Ректо-цервікальний.

155. Помилки під час визначення оптимального часу для введення сперми призводять до: