Среднее значение длины корней редиса в контроле и в опыте

Степень разбавления сточной воды	Контроль	100%	50%	25%	12.5 %
Среднее значение длины корней, мм	16,60	4,69	20,03	17,07	14,76

 

По отношению к контролю длина корней, проросших в неразбавленной сточной воде ниже 70 % (см. рисунок 1), то есть вода обладает ингибирующими свойствами по отношению к семенам редиса.

Рисунок 1.

 

При разбавлении исследуемой воды в 2 раза длина корней в опыте свыше 120 % от контроля. Это значит, что при данной степени разбавления вода обладает стимулирующими свойствами (рисунок 2).

 

Рисунок 2.

При разбавлении исследуемой воды в 4 раза длина корней в опыте не превышает порог в 120 % от контроля, соответственно, вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами по отношению к семенам редиса (Рисунок 3).

Рисунок 3

При разбавлении исследуемой воды в 8 раз длина корней в опыте не ниже 70 % и не превышает 120 %, значит, вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами по отношению к семенам редиса (Рисунок 4).

 

Рисунок 4.

Проведение биотестирования на семенах кресс-салата

 

По окончании эксперимента на семенах кресс-салата(Lepidiumsativum) были получены следующие результаты (Таблица 2).

Таблица 2.

Среднее значение длины корней кресс-салата в контроле и в опыте

Степень разбавления сточной воды	Контроль	100%	50%	25%	12.5 %
Среднее значение длины корней, мм	43,66	23,71	50,02	60,84	47,93

 

По отношению к контролю длина корней, проросших в неразбавленной сточной воде ниже 70 %(см. рисунок 5), то есть вода обладает ингибирующими свойствами по отношению к семенам кресс-салата.

 

Рисунок 5.

При разбавлении исследуемой воды в 2 раза длина корней в опыте не превысила 120 % от контроля. Это значит, что при данной степени разбавления вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами (Рисунок 6).

Рисунок 6.

При разбавлении исследуемой воды в 4 раза длина корней в опыте свыше 120 % от контроля, соответственно, вода обладает стимулирующими свойствами по отношению к семенам кресс-салата (Рисунок 7).

 

 

Рисунок 7.

 

При разбавлении исследуемой воды в 8 раз длина корней в опыте не ниже 70 % и не превышает 120 %, значит, вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами по отношению к семенам кресс-салата(Рисунок 8).

 

Рисунок 8.

Проведение биотестирования на семенах овса

 

По окончании эксперимента на семенах овса(Avenasativa) были получены следующие результаты (Таблица 3).

Таблица 3.

Среднее значение длины корней овса в контроле и в опыте

Степень разбавления сточной воды	Контроль	100%	50%	25%	12,50%
Среднее значение длины корней, мм	12,38	15,53	11,63	13,22	11,40

 

По отношению к контролю длина корней, проросших в неразбавленной сточной воде не превышает порог в 120 % (см. рисунок 9), то есть вода не обладает ни ингибирующими свойствами, ни стимулирующими свойствами по отношению к семенам овса.

Рисунок 9.

При разбавлении исследуемой воды в 2 раза длина корней в опыте не ниже 70 % и не превышает 120 %, значит, вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами по отношению к семенам овса(Рисунок 10).

Рисунок 10.

При разбавлении исследуемой воды в 4 раза длина корней в опыте не ниже 70 % и не превышает 120 %, значит, вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами по отношению к семенам овса(Рисунок 11).

Рисунок 11.

При разбавлении исследуемой воды в 8 раз длина корней в опыте не ниже 70 % и не превышает 120 %, значит, вода не обладает ни стимулирующими, ни ингибирующими свойствами по отношению к семенам овса (Рисунок 12).

 

Рисунок 12.

 

Таким образом, проведении биотестирования на семенах редиса красногокруглого с белым кончиком(Raphanussativus L.)было выявлено, что неразбавленная сточная вода обладает ингибирующим действием на семена. При разбавлении воды в 2 раза наблюдается стимулирующее действие, при большем разбавлении ингибирующего или стимулирующего эффекта не замечено.

При проведении биотестирования на семенах кресс-салата(Lepidiumsativum) обнаружено следующее – неразбавленная проба отказывает на семена ингибирующее воздействие, при разбавлении же не оказывает подобного воздействия, при разбавлении в 4 раза стимулирует развитие корней.

При проведении биотестирования на семенах овса(Avenasativa) не было выявлено ни стимулирующего, ни ингибирующего действия на семена.

 

Выводы

 

1. Согласно данным протоколов анализа проб сточной воды, значения таких показателей качества воды, как содержание железа, кадмия, меди, никеля, свинца, хрома трех- и шестивалентного, цинка и марганца, характерных для стоков гальванопроизводства, не превышают установленные нормативы качества воды для городских очистных сооружений и канализации.

2. Биотестирование пробы воды на семенах культурных растений показало следующие результаты:

1. При проведении биотестирования на семенах редиса красногокруглого с белым кончиком(Raphanussativus L.)выявлено, что неразбавленная сточная вода обладает ингибирующим действием на семена. При разбавлении воды в 2 раза наблюдается стимулирующее действие, при большем разбавлении ингибирующего или стимулирующего эффекта не замечено.

2. При проведении биотестирования на семенах кресс-салата(Lepidiumsativum) обнаружено следующее – неразбавленная проба отказывает на семена ингибирующее воздействие, при разбавлении же не оказывает подобного воздействия, при разбавлении в 4 раза стимулирует развитие корней.

3. При проведении биотестирования на семенах овса (Avenasativa) не было выявлено ни стимулирующего, ни ингибирующего действия на семена.

 

Приложение 1.

 

 

 

Список использованной литературы

1. Багдасарян А.С. Эффективность использования тест-систем при оценке токсичности природных сред // Экология и промышленность России – 2007, №1. – с. 44-48.

2. Баширова Р.М. Экотоксикология: Учебное пособие. – Уфа: РИЦ БашГУ, 2006. – 162 с.

3. Гарипова Р.Ф. Новые технологии биотестирования вод, почв,

биологически активных веществ на дрожжевых культурах и в фитотестах // Проблемы региональной экологии – 2008, №3. – с. 101-106.

4. Гарипова Р.Ф. Новые технологии биотестирования вод, почв, биологически активных веществ на дрожжевых культурах и в фитотестах // Проблемы региональной экологии – 2009, №1. – с. 135-140.

5. Еремкина Т.В., Шпакова С.П. Методы биотестирования в практике работы экоаналитических лабораторий // Экология производства – 2009, №4. – с. 34-37.

6. МДК 3-01.2001. Методические рекомендации по расчету количества и качества принимаемых сточных вод и загрязняющих веществ в системы канализации населенных пунктов" (утв. Приказом Госстроя РФ от 06.04.2001 N 75).

7. Мешенгиссер Ю.М., Колесник Ю.В., Зинченко Д.Б., Дайнеко Ф.А., Ганин А.В. Использование нового метода обезвоживания осадков сточных вод // Водоснабжение и санитарная техника – 2009, №4 – с. 55-59.

8. Пушкарь В.Я., Щеголькова Н.М., Козлов М.Н., Данилович Д.А. Биотестирование биологически очищенных сточных вод // Экология и промышленность России – 2006, №4. – с. 29-31.

9. Руководство по определению методом биотестирования токсичности вод, донных отложений, загрязняющих веществ и буровых растворов. – М.: РЭФИА, НИА–Природа, 2002. – 118 с.

 

10. Санитарные правила и нормыСанПиН 2.1.7.573-96"Гигиенические требования к использованию сточных вод и их осадковдля орошения и удобрения"(утв. постановлением Госкомсанэпиднадзора РФот 31 октября 1996 г. N 46) ).

11. Стахов А.А. Экологическое нормирование – основа природоохранной работы // Вода и экология – 2001, №1. – с. 62-63.

12. Санитарные правила и нормыСанПиН 2.1.5.980-00 «Гигиенические требования к охране поверхностных вод»(утв. Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 22 июня 2000 г.)

13. Строительные нормы и правила СНиП 2.04.02-84 «Водоснабжение. Наружные сети и сооружения»(утв.Госстрой СССР Постановление № 12327.07.1984)

14. Тах И.П. Использование тест-объектаLemnaMinnorL. В оценке токсичности сточных вод // Экология и промышленность России – 2008, №11. – с. 29-31.

15. Чупис В.Н., Лущай Е.А., Ларин И.Н., Загреков А.А., Ильина Е.В., Иванов Д.Е. Система биотестов для экологического мониторинга // Экология и промышленность России – 2008, №1. – с. 44-45.