Схемы протоколов практических работ

РАБОТА № 1.  Мастикациография (демонстрация).

(«Практикум …», работа № 4.4, с. 126)

Мастикациография – метод регистрации жевательных движений нижней че­люсти. Он позволяет изучать фазы процесса жевания и их особенности, характеризующие состояние жевательного аппарата обследуемого.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ. Ознакомиться с одним из методов исследования функциональногосостояния жевательного аппарата. Изучить фазы мастикациограммы. 

СХЕМА РАБОТЫ

На схеме обозначить:

1. Голова обследуемого,

2. Пневматическая манжетка,

3. Соединительная трубка,

4. Капсула Марея,

5. Писчик,

6. Кимограф.

РЕЗУЛЬТАТЫ РАБОТЫ

Схема мастикациограммы, полученной при жевании хлеба:

 

 

 

На схеме обозначить фазы процесса жевания: I – покоя, II – приема пищи, III – ориентировочного жевания, IV – истинного жевания, V – формирования пи­щевого комка и глотания.

ВЫВОД: (Отметить особенности движений в различные фазы жевания при пережевывании хлеба).

 

 

РАБОТА № 2. Морфологическая основа слюноотделительного

Рефлекса.

Безусловный слюноотделительный рефлекс возникает в ответ на раздражение рецепторов полости рта.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ. При помощи таблиц изучить центральные и периферические структуры, образующие морфологическую основу слюноотделительного рефлекса.

РЕЗУЛЬТАТЫ РАБОТЫ

Схема морфологической основы (рефлекторной дуги)

слюноотделительного рефлекса.

 

На схеме обозначить:

1 – язык. Афферентные нервы, иннервирующие язык: 2 – язычный (V), 3 – барабанная струна (VII), 4 – языко-глоточный (IX), 5 – верхнегортанный (X). Ядра продолговатого мозга: 6 – ядро одиночно­го пучка (афферентное); 7 – верхнее и 8 – нижнее слюноотделительные ядра (эфферентные). Эфферентные парасимпатические нервы, иннервирующие железы: 9 – барабан­ная струна, 10 – ушно-височный. Периферические парасимпатические ганглии: 11 – ушной, 12 – поднижнечелюстной. Эфферентные симпатические структуры: 13 – сегмент грудного отдела спинного мозга; 14 – симпатический центр; 15 – симпатический верхний шейный ганглий; 16 – симпатические нервы. Слюнные железы: 17 – околоушная, 18 – поднижнечелюстная, 19 – подъязычная.

ВЫВОД: (Описать последовательность возбуждения различных типов рецепто­ров слизистой ротовой полости при приеме пищи и особенности секреции слюнных желез при разд­ражении симпатических и парасимпатических нервов).

РАБОТА №3. Амилолитическая активность слюны.

(Выполняется на виртуальной модели.)

ЦЕЛЬ РАБОТЫ. Изучить амилолитическую активность слюны животных в зависимости от различных показателей рН.

ХОД РАБОТЫ. Амилаза слюны расщепляет крахмал до декстринов и дисахаров (мальтоза). Для оценки степени переваривания крахмала используют индикатор иодид калия (KI), который в присутствии крахмала дает сине-черное окрашивание. Для выявления продуктов расщепления крахмала используют реактив Бенедикта. Он имеет ярко-синий цвет, который меняется от зеленого к красновато-коричневому в зависимости от количества образовавшейся мальтозы.

Запустить программу «Виртуальные задачи (англ) новые», выбрать раздел «Chemical and Physical Processes of Digestion» (химические и физические процессы пищеварения), выбрать эксперимент «Amylase» (Амилаза). Установить в прибор 7 пробирок. В соответствии с таблицей внести в них амилазу, крахмал (Starch) или мальтозу, дистиллированную воду, кислотно-щелочной буфер (Buffer). Первую пробирку прокипятить, нажав клавишу Boil. После этого все 7 пробирок поместить в термостат на 1 час для инкубации при t=37°C. После инкубации содержимое каждой пробирки разделить пополам. Получают два ряда по 7 пробирок. В пробирки одного ряда добавить реактив Бенедикта, другого – KI. В пробирках, где есть крахмал, KI дает сине-черный цвет (положительный тест на наличие крахмала). Если крахмала нет, то смесь будет похожа на растворенный KI (отрицательный тест на наличие крахмала). Если крахмал присутствует в небольшом количестве, то цвет смеси будет приближаться к бледно-серому. Все пробирки с реактивом Бенедикта прокипятить, после чего проанализировать их содержимое. Наличие зеленого цвета, переходящего к красноватому, указывает на присутствие небольшого количества мальтозы (положительный сахарный тест). Увеличение количества мальтозы вызывает оранжевое окрашивание раствора. Красновато-коричневый цвет указывает на еще большее содержание мальтозы. Сохранение исходного цвета реактива (ярко-синий) указывает на отсутствие мальтозы (отрицательный сахарный тест).

РЕЗУЛЬТАТЫ РАБОТЫ

Амилолитическое действие слюны на крахмал животных
№ пробирки	1	2	3	4	5	6	7
Содер- жание	Амилаза Крахмал Буфер рН=7.0	Ами-лаза Крах-мал Буфер рН=7.0	Ами-лаза Дистиллир.вода Буфер рН=7.0	Дистиллир.вода Крахмал Буфер рН=7.0	Дистиллир. вода Мальтоза Буфер рН=7.0	Ами-лаза Крах-мал Буфер рН=2.0	Ами-лаза Крах-мал Буфер рН=9.0
Условия инкубации в термостате	Предва-рит. кипячение, 1 час при 37^0С	1 час при 37^0С	1 час при 37^0С	1 час при 37^0С	1 час при 37^0С	1 час при 37^0С	1 час при 37^0С
Реактив Бене-дикта. Окраска
KI Окраска

ВЫВОД: (Объяснить изменение амилолитической активности слюны в зависимости от pH и воздействия высокой температуры. Отметить, при каких значениях рН наблюдается лучшее переваривание крахмала амилазой).