Заглавная страница Избранные статьи Случайная статья Познавательные статьи Новые добавления Обратная связь КАТЕГОРИИ: АрхеологияБиология Генетика География Информатика История Логика Маркетинг Математика Менеджмент Механика Педагогика Религия Социология Технологии Физика Философия Финансы Химия Экология ТОП 10 на сайте Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрацииТехника нижней прямой подачи мяча. Франко-прусская война (причины и последствия) Организация работы процедурного кабинета Смысловое и механическое запоминание, их место и роль в усвоении знаний Коммуникативные барьеры и пути их преодоления Обработка изделий медицинского назначения многократного применения Образцы текста публицистического стиля Четыре типа изменения баланса Задачи с ответами для Всероссийской олимпиады по праву Мы поможем в написании ваших работ! ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?
Влияние общества на человека
Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации Практические работы по географии для 6 класса Организация работы процедурного кабинета Изменения в неживой природе осенью Уборка процедурного кабинета Сольфеджио. Все правила по сольфеджио Балочные системы. Определение реакций опор и моментов защемления |
В. Укажите диагностическое значение метода.
А. При рН=3(кислая среда) отрицательно заряженные группы R-COO- переходят в R-COOH, при этом остаются только положительно заряженные R—NH3+, пептиды перемещаются к катоду или остаются на старте. а: При pH 3,0 гистидин, аргинин и лизин несут заряд + 2 и движутся к отрицательно заряженному катоду быстрее остальных аминокислот, заряд которых равен + 1, поэтому пептид приближен к катоду. Пептид, в состав которых входят аминокислоты тольк с зарядом +1, останутся на линии старта. 1- к катоду; 2- к катоду; 3- к катоду; 4- на старте; 5- к катоду. б: При рН=10,0 (щелочная среда) положительно заряженные группы NH3+ переходят в NH2, при этом остаются только отрицательно заряженные R-COO-, пептиды перемещаются к аноду или остаются на старте. При рН=10,0 глутамат будет иметь заряд -2 и двигаться к положительно заряженному аноду быстрее остальных аминокислот, имеющих заряд -1. Пептиды имеющие в своем составе только аминокислоты с зарядом -1 останутся на старте. 1- на старте; 2- к аноду; 3- к аноду; 4- к аноду; 5- на старте.
Б. Электрофорез – явление перемещения частиц коллоидных растворов под действием внешнего электрического поля. Виды: электрофорез в жидкостях, на бумаге и в блоках (крахмальном, полиакриламидном и т.д.) Электрофорез на бумаге осуществляется на листах (полосках) хроматографической или фильтровальной бумаги, концы которой опущены в электродные камеры. Разделяемая смесь наносится на бумагу в виде пятна либо узкой зоны. По способу отведения теплоты, выделяющейся при прохождении через бумагу электрич. тока, используют приборы: с охлаждающими пластинами из изолирующих материалов; с охлаждающей несмешивающейся с водой орг. жидкостью, например керосином; с естеств. охлаждением бумаги на воздухе или во влажной камере. В отличие от электрофореза на бумаге, где скорость движения белков пропорциональна только их суммарному заряду, в полиакриламидном геле скорость движения белков пропорциональна их молекулярным массам. Разрешающая способность электрофореза в полиакриламидном геле выше, чем на бумаге. При электрофорезе белков сыворотки крови человека на бумаге обнаруживают только 5 главных фракций. Электрофорез тех же белков в полиакриламидном геле позволяет получить до 18 различных фракций. Электрофорез проводят в тонком слое полиакриламида. После завершения электрофореза, зоны белков выявляют c помощью красителя.
Электрофорез белков крови используют для определения белковых фракций крови. Принцип разделения белков сыворотки крови на фракции состоит в том, что в электрическом поле белки сыворотки крови движутся по смоченной буферным раствором хроматографической бумаге (ацетатцеллюлозной пленке, крахмаловому, агаровом гелям) со скоростью, зависящей в основном от величины электрического заряда и молекулярной массы частиц. Унифицированным методом является электрофорез на пленках из ацетата целлюлозы. При помощи данного метода белки сыворотки крови можно разделить на 5 фракций в соответствии с уменьшением их электрофоретической подвижности(альбумины, альфа-1-глобулины, альфа-2-глобулины, бета-глобулины, гамма-глобулины). Альбумины – самая большая и наиболее быстро движущаяся к аноду фракция, далее следует a1-глобулины, a2-глобулины, b-глобулины, g-глобулины – наиболее медленно движущаяся к аноду фракция. В. Это исследование в диагностическом отношении более информативно чем определение только общего белка или альбумина. При многих заболеваниях изменяется процентное соотношение белковых фракций, хотя общее содержание белка в сыворотке крови остается в пределах нормы. Процентное соотношение белковых фракций на электрофореграммах следующее: альбумины – (55,5% ± 4,5%), a1-глобулины – (4,8% ± 1,3%), a2-глобулины – (9,6% ± 1,7%), b-глобулины – (11,8% ± 2,8%), g-глобулины – (17,6% ± 2,3%). Анализ фореграммы белков позволяет установить, за счет какой фракции происходит увеличение или дефицит белка, а также судить о специфичности изменений, характерных для данной патологии. Исследование белковых фракций, позволяет судить о характерном для какого-либо заболевания избытке или дефиците белка только в самой общей форме. При анализе результатов исследования сыворотки крови на белковые фракции выявляются три типа нарушений: 1. Диспротеинемия (изменение соотношения белковых фракций) 2. Генетические дефекты синтеза белков 3. Парапротеинемия (аномальные белки в крови) 5
|
|||||
Последнее изменение этой страницы: 2021-09-26; просмотров: 110; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы! infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 3.145.115.195 (0.004 с.) |