Департамент охраны здоровья населения кемеровской области

ДЕПАРТАМЕНТ ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ НАСЕЛЕНИЯ КЕМЕРОВСКОЙ ОБЛАСТИ

ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» РОСЗДРАВА

ГУЗ «Кемеровская областная клиническая больница»

АССОЦИАЦИЯ МЕДИЦИНСКИХ СЕСТЕР КУЗБАССА

 

 

«Утверждаю» Главный врач ГУЗ КОКБ, д.м.н. Новиков В.Э.   _____________________ «___»____________2011 г.

 

 

Инструктивно-методическое пособие

Для практикующих медицинских сестер

«Организация санитарно-противоэпидемического и

Дезинфекционно-стерилизационного режимов в ЛПУ»

 

Кемерово 2011г

УДК 616 - 036.22

 

Авторы:

к.м.н, заведующая эпидемиологическим отделом ГУЗ «Кемеровская областная клиническая больница» Н.Б. Миловидова	д.м.н., профессор кафедры эпидемиологии ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» Е.Б.Брусина
д.м.н., профессор кафедры эпидемиологии ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» О.М.Дроздова

 

 

Инструктивно-методическое пособие подготовлено для организации санитарно-противоэпидемического и дезинфекционно-стерилизационного режимов в ЛПУ. Предназначено для практикующих медицинских сестер.

Подлежат ежегодному пересмотру.

 

Рецензенты: д.м.н., проф. Лишов Е.В., к.м.н. Л.С. Глазовская,

Т.В. Дружинина

 

 

Технологический протокол утвержден на заседании Ученого Совета ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» Росздрава (протокол №____ от «___»_____________2011г.), Департаментом охраны здоровья населения Кемеровской области «____» _________ 2011г.

 

 

© Н.Б. Миловидова, Е.Б. Брусина, О.М.Дроздова

© ГУЗ Кемеровская областная клиническая больница

© ГОУ ВПО КемГМА МЗ РФ

 

 

Кемерово, 2011г.

Оглавление

Введение
Раздел 1. Противомикробные мероприятия. Общая характеристика
Раздел 2. Категория предметов ухода за больными
Раздел 3. Камерная дезинфекция
Раздел 4. Ультрафиолетовое облучение
Раздел 5. Методы контроля качества дезинфекции
Раздел 6. Предстерилизационная очистка
Раздел 7. Стерилизация. Методы стерилизации
Раздел 8. Сроки сохранения стерильности материалов
Раздел 9. Безопасность медицинского персонала
Раздел 10. Обработка рук, операционного и инъекционного полей
Раздел 11. Регистрация и мероприятия при аварийных ситуациях
Раздел 12. 7 правил универсальных мер безопасности медицинского персонала от инфекции
Раздел 13. Санитарно-противоэпидемический режим
Раздел 14. Особенности организации санитарно-противоэпидемического режима подразделения различного профиля
Раздел 15. Санитарное содержание помещений, оборудования, инвентаря
Раздел 16. Бельевой режим
Раздел 17. Уборка помещений по типу текущей дезинфекции
Раздел 18. Уборка по типу заключительной дезинфекции
Раздел 19. Гигиенические требования при организации питания больных в отделении
Раздел 20. Классификация медицинских отходов
Раздел 21. Изоляционно-ограничительные мероприятия
Раздел 22. Общие сведения по госпитальным инфекциям
Раздел 23. Вирусные гепатиты. Общие сведения
Раздел 24. ВИЧ-инфекция
Нормативная документация, список использованной литературы

Введение

Организация санитарно-противоэпидемического и дезинфекционно-стерилизационного режимов в лечебно-профилактических учреждениях является отражением качества оказания медицинской помощи. Соблюдение принципов организации позволяет снизить частоту внутрибольничных инфекций в стационарах различного профиля, длительность пребывания пациентов в стационаре и экономические расходы, связанные с госпитализацией.

В настоящем инструктивно-методическом пособии представлены основные методы дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации, методы контроля их качества. Особое внимание уделяется методике мытья рук, безопасности медицинского персонала при работе с биологическими жидкостями. Рассматриваются вопросы, связанные с организацией санитарно-противоэпидемического режима в стационарах различного профиля, бельевого режима, питания больных, проведения текущей и заключительной дезинфекции, утилизацией отходов.

Для обеспечения инфекционной безопасности как пациентов, так и персонала, в инструктивно-методическом пособии представлены основные изоляционно-ограничительные мероприятия и алгоритм действия медицинского персонала при поступлении инфицированных пациентов. Дана характеристика госпитальных инфекций, гемоконтактных гепатитов, ВИЧ-инфекции – теоретические аспекты и меры профилактики их распространения.

Инструктивно-методическое пособие составлено в соответствии с действующими нормативными документами Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации и предназначено для медицинского персонала лечебно-профилактических учреждений.

Раздел 1

Противомикробные мероприятия. Общая характеристика

 

Противомикробные мероприятия – совокупность способов и методов уничтожения, подавления жизнедеятельности, снижения численности популяции и ограничения распространения возбудителей инфекций в целях лечения, предупреждения развития и распространения инфекционных заболеваний (рис.1).

 

Рис.1. Противомикробные мероприятия

 

Стерилизация – совокупность физических и химических способов полного освобождения объектов внешней среды от вегетативных и споровых форм микроорганизмов.

 

Антисептика – Совокупность способов удаления, уничтожения или подавления жизнедеятельности микроорганизмов в ранах, на коже, слизистых оболочках, полостях в целях лечения и предупреждения развития инфекционного процесса.

 

Химиотерапия – меры, направленные на прямое уничтожение или подавление возбудителей во внутренней среде организма в целях лечения или профилактики инфекционных и паразитарных болезней.

 

Дезинфекция – частичное, селективное уничтожение потенциальных возбудителей инфекционных болезней на объектах внешней среды с целью разрыва путей передачи возбудителей инфекционных заболеваний от источников инфекций к восприимчивым людям.

Различают следующие виды и методы дезинфекции (рис.2):

 

Очаговая дезинфекция - проводится в очагах инфекционных заболеваний и подразделяется на текущую и заключительную.

Ø Текущая дезинфекция – проводится в действующем эпидемическом очаге в присутствии источника инфекции с целью снижения массивности микробной контаминации окружающей больного внешней среды.

Ø Заключительная дезинфекция – предполагает полное уничтожение возбудителей болезни в очаге после удаления из него источника инфекции (госпитализации в инфекционный стационар, выздоровления, выезда, смерти).

 

Рис.2. Виды и методы дезинфекции

 

Профилактическая дезинфекция – проводится в отсутствие источника инфекции с целью предотвращения накопления во внешней среде возбудителей инфекционных болезней.

Различают физические, химические и биологические методы дезинфекции.

Физические методы дезинфекции:

· Механические – чистка, влажная уборка, стирка, выколачивание, вытряхивание, проветривание, фильтрация.

· Термические – воздействие сухого горячего воздуха, водяного пара, горячей воды, обжигание, прокаливание, сжигание, пастеризация, тиндализация, холод, высушивание.

· Лучистые – солнечный свет, ультрафиолетовые лучи.

Химические методы дезинфекции – основаны на применении различных химических веществ (дезинфицирующие средства, антисептики и др.), обладающих антимикробным действием.

Биологические методы дезинфекции - основаны на применении различных биологических веществ, обладающих антимикробным действием (биотермические камеры, компостирование, бактериофаги и т.д.).

 

Раздел 2

Категория предметов ухода за больными (Spaulding)

По степени риска инфицирования все предметы, контактирующие с пациентами подразделяются на:

· «Критические» предметы – предметы, проникающие через покровы в ткани организма, которые в случае их контаминации любыми микроорганизмами, в том числе спорами бактерий, обусловливают высокую степень риска заражения больных.

· «Полукритические» предметы – предметы, контактирующие с неповрежденными слизистыми оболочками и кожей, которые не должны содержать на своей поверхности никаких микроорганизмов, не считая спор бактерий.

· «Некритические» предметы – предметы, контактирующие с неповрежденной кожей, но не со слизистыми.

Такое разделение предметов связано с обеспечением необходимого уровня и особенностей технологий обеззараживания (таблица 1,2).

 

Таблица №1. Категория предметов ухода за больными

Тип предмета	Виды	Необходимый уровень обеззараживания и средства
«Критические»	инструменты, сосудистые катетеры, имплантаты, стерильные жидкости, иглы и т.д.	Стерилизация (стерилянты, спороцидные дезинфицирующие средства при длительном времени контакта)
«Полукритические»	оборудование для ингаляций и анестезии, желудочно-кишечные эндоскопы и термометры; ларингоскопы и т.д.	Дезинфекция высокого уровня (стерилянты, спороцидные дезинфицирующие средства при кратковременном контакте)
«Некритические»	подкладные судна, манжеты аппаратов для измерения давления крови, посуда, больничная мебель, посуда и т.д.).	Дезинфекция промежуточного (туберкулоцидные дезинфицирующие средства) или низкого уровня

 

Таблица №2.Особенности различных технологий обеззараживания

Виды обеззараживания	Уровни обеззараживания	Обеззараживающие средства и режимы
Стерилизация	Уничтожение всех вегетативных микроорганизмов и спор.	Высокая температура (пар или сухой жар). Газо- или парообразные стерилизующие средства (окись этилена, формальдегид и т.д.). Плазма перекиси водорода. Радиационный метод (Гамма- или бета-излучение). Жидкие спороцидные стериллянты при длительной экспозиции (6-12 часов): · альдегиды · перекись водорода (6%) · надуксусная кислота(Дезоксон-1)
Дезинфекция высокого уровня	Уничтожение всех вегетативных микроорганизмов и части спор. Возможно сохранение части спор.	Жидкие спороцидные дезинфектанты при кратковременной экспозиции (10-60 мин): · альдегиды · орто-фталевый альдегид · перекись водорода (6%) · надуксусная кислота
Дезинфекция промежуточного (среднего) уровня	Уничтожение микобактерий туберкулеза и всех других вегетативных бактерий; всех грибов и большинства вирусов	Туберкулоцидные средства: · фенолы · иодофоры · хлорактивные вещества · спирты
Дезинфекция низкого уровня	Уничтожение большинства вегетативных бактерий, некоторых вирусов (гепатиты В, С, ВИЧ, герпес, грипп и др.) и некоторых грибов (кроме микобактерий туберкулеза).	Четвертичные аммониевые соединения (ЧАС)

 

В ЛПУ должен быть не менее чем месячный запас разнообразных дезинфицирующих средств (ДС) различного химического состава и назначения в соответствии с расчетной потребностью. В целях предупреждения возможного формирования резистентных к дезинфектантам штаммов микроорганизмов следует проводить мониторинг устойчивости госпитальных штаммов к применяемым дезинфицирующим средствам с последующей их ротацией (последовательная замена дезинфектанта из одной химической группы на дезинфектант из другой химической группы) при необходимости

Раздел 3

Камерная дезинфекция

Камерная дезинфекция является одним из существенных звеньев противомикробных мероприятий. Используется после выписки каждого больного из отделения или является обязательным мероприятием в очаге инфекции для обеззараживания хлопчатобумажных, шерстяных, суконных, кожаных и меховых вещей, матрацев, одеял, подушек, утиля, документов и книг.

В зависимости от действующего агента дезинфекционные камеры делятся на 4 группы:

· Паровые, в которых обеззараживание производится насыщенным текучим водяным паром в условиях повышенного давления. · Горячевоздушные – сухим нагретым воздухом. · Пароформалиновые – пароформальдегидная смесь и увлажненный нагретый воздух. · Газовые – химические газовые вещества (сернистый ангидрид, окись этилена, метилбромид, хлорпикрин др.).

 

Раздел 4

Ультрафиолетовое облучение

Таблица 4. Допустимые уровни бактериальной обсемененности воздушной среды помещений ЛПУ в зависимости от их функционального назначения и класса чистоты

№	Класс чистоты	Название помещения	Санитарно-микробиологические показатели
Общее количество микроорганизмов в 1 м^3 воздуха (ОМЧ), КОЕ/м^3	Количество колоний Staphylococcus aureus в 1 м^3 воздуха, КОЕ/м^3
До начала работы	Во время работы	До начала работы	Во время работы
	Особо чистые (А)	Операционные, послеоперационные палаты, реанимационные залы (палаты), в том числе для ожоговых больных, палаты интенсивной терапии, родовые, манипуляционные-туалетные для новорожденных. Аптеки - помещения для приготовления лекарственных форм в асептических условиях.	Не более 200	Не более 500	Не должно быть	Не должно быть
	Чистые (Б)	Послеродовые палаты, палаты для ожоговых больных, палаты для лечения пациентов в асептических условиях, в том числе для иммуннокомпрометированных. Послеродовые палаты с совместным пребыванием ребёнка, палаты для недоношенных, грудных, травмированных, новорожденных (второй этап выхаживания). Ренггеноперационные, в том числе ангиографические. Стерилизационные при операционных. ЦСО - чистая и стерильная зоны (контроля, комплектования и упаковки чистых инструментов, помещения для подготовки перевязочных и операционных материалов и белья, стерилизации, экспедиции). Процедурные и асептические перевязочные, процедурные бронхоскопии. Малые операционные. Ассистенская, дефектарская, заготовочная и фасовочная, закаточная и контрольно-маркировочная, стерилизационная-автоклавная, дистилляционная.	Не более 500	Не более 750	Не должно быть	Не должно быть
	Условно-чистые (В)	Шлюзы в боксах и полубоксах инфекционных отделений. Боксы палатных отделений, боксированные палаты. Палатные секции инфекционного отделения в том числе туберкулёзные. Палаты для взрослых больных, помещения для матерей детских отделений. Шлюзы перед палатами для новорожденных. Кабинеты врачей, помещения дневного пребывания пациентов, Кабинеты функциональной диагностики, процедурные эндоскопии (кроме бронхоскопии). Залы лечебной физкультуры. Процедурные магнитно-резонансной томографии. Процедурные с применением аминазина. Процедурные для лечения нейролептиками.	Не нормируются
	Грязные (Г)	ЦСО - грязная зона (приема, разборки, мытья и сушки медицинских инструментов и изделий медицинского назначения) Диспетчерские, комнаты персонала, комнаты отдыха пациентов после процедур Процедурные и раздевальные рентгендиагностических флюорографических кабинетов, кабинеты электросветолечения, массажный кабинет Комнаты управления рентгеновских кабинетов и радиологических отделений, фотолаборатории Монтажные и моечные кабинетов искусственной почки, эндоскопии, аппаратов искусственного кровообращения, растворные – деми-нирализационные Ванные залы (кроме радоновых), помещения подогрева парафина и озокерита, лечебные плавательные бассейны. Помещения (комнаты) для санитарной обработки больных, душевые Раздевальные в отделениях водо- и грязелечения лечения Помещения радоновых ванн, залы и кабинеты грязелечения для полосных процедур, душевые залы Помещения для хранения и регенерации грязи.	Не нормируются

Раздел 5

Методы контроля качества дезинфекции

Для оценки качества проведения дезинфекции проводятся следующие методы:

1. Визуальный.

2. Химический – химические экспресс-пробы на остаточное количество дезинфицирующих веществ.

3. Бактериологический – исследуют смывы с объектов внешней среды на микробную обсемененность и бактериологический тестовый контроль дезкамер.

Показатели удовлетворительного качества дезинфекционных мероприятий:

· Отрицательные результаты посевов проб со всех объектов внутрибольничной среды.

· Определение заниженных концентраций дезрастворов не более чем в 5% отобранных проб.

· Выявление неудовлетворительных экспресс-проб на остаточное количество дезрастворов не более чем в 2% от числа поставленных проб каждого вида.

· Соответствие тестового бактериологического контроля режимам камерной дезинфекции.

· Показатели обсемененности воздуха, не превышающие установленные нормативы.

· Отсутствие в помещениях ЛПО грызунов, подтвержденное с применением субъективной оценки и объективных методов обнаружения.

· Отсутствие в помещениях ЛПО членистоногих, подтвержденное с применением субъективной оценки и объективных методов обнаружения.

 

Смывы с объектов внешней среды, бактериологический контроль воздуха и стерильность материалов проводит лицензированная бактериологическая лаборатория ЛПУ или Лаборатории Роспотребнадзора (согласно договора). Отбор проб производит специально обученный лаборант в стерильные емкости или пробирки. Медицинскому персоналу подразделений ЛПУ самостоятельно производить отбор проб запрещается!

 

Раздел 6

Предстерилизационная очистка

Предстерилизационной очистке должны подвергаться все изделия перед их стерилизацией с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов.

Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очистке в разобранном виде.

Предстерилизационная очистка должна осуществляться ручным или механизированным (с помощью специального оборудования) способом.
Механизированная предстерилизационная очистка должна производиться струйным, ротационным методами, ершеванием или с применением ультразвука с использованием поверхностно - активных веществ и других добавок. Методика проведения механизированной очистки должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к оборудованию.

Ершевание резиновых изделий не допускается.

Предстерилизационная очистка ручным способом должна осуществляться в последовательности в соответствии с ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция и изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».

При использовании моющего раствора, содержащего 0,5% перекиси водорода и 0,5% синтетического моющего средства "Лотос", применяют ингибитор коррозии - 0,14% олеата натрия.

По окончании рабочей смены оборудование должно быть очищено механическим способом путем мытья с применением моющих средств.

Инструменты в процессе эксплуатации, предстерилизационной очистки, стерилизации могут подвергаться коррозии. Инструменты с видимыми пятнами коррозии, а также с наличием оксидной пленки подвергаются химической очистке не более 1 - 2 раз в квартал.

Если инструмент, загрязненный кровью, может быть промыт под проточной водой тотчас же после использования при операции или манипуляции, его не погружают в раствор ингибитора коррозии (бензоат натрия).

В случае необходимости (продолжительность операций) инструмент можно оставить погруженным в моющий раствор с ингибитором коррозии до 7 часов.

Моющий раствор допускается применять до загрязнения (до появления розовой окраски, что свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающем эффективности очистки). Моющий комплекс перекиси водорода с синтетическими моющими средствами можно использовать в течение двух суток с момента изготовления, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода не изменяется.

 

Методы контроля и показатели качества предстерилизационной очистки:

1. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят центры Роспотребназора при плановой и внеплановой проверках ЛПУ.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦСО) ежедневно, в отделениях – ежедневно. Кроме того, контролирует не реже 1 раза в неделю старшая медицинская сестра (акушерка) ЦСО или отделения.

2. Контролю подлежит: в ЦСО - 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях - 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.

3. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств.

4. Методика приготовления реактивов для постановки проб.

Азопирамовая проба.

4.1.1. Приготовление исходного раствора.

Для приготовления 1 л (куб. дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб. дм) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет 2 месяца при температуре 4 град. С (в холодильнике); при комнатной температуре (20+/-2 град. С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора в процессе хранения без выпадения осадка не снижает рабочих свойств раствора.

4.1.2. Приготовление реактива азопирам.

Перед постановкой пробы готовят реактив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться розовое спонтанное окрашивание реактива. При температуре выше +25 град. С раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Амидопириновая проба.

Готовят 5% спиртовой раствор амидопирина на 95% этиловом спирте. Данный раствор должен храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике; срок годности раствора - 1 месяц.

Готовят 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода на дистиллированной воде.

Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. Реактив готовят перед применением.

Фенолфталеиновая проба.

Готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина на 95% этиловом спирте; раствор хранят во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение месяца.

5. Методика постановки проб.

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделий на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку.

Таблица 5

Код формы по ОКУД

Код учреждения по ОКПО

Министерство здравоохранения РФ Наименование учреждения

Медицинская документация. Форма N 366/у. Утверждена Минздравом СССР 04.10.80. пр. N 1030

 

ЖУРНАЛ

Таблица 6

Код формы по ОКУД

Код учреждения по ОКПО

Министерство здравоохранения РФ		Медицинская документация. Форма N 257/у. Утверждена Минздравом СССР 04.10.80. пр. N 1030
Наименование учреждения

 

ЖУРНАЛ

РАБОТЫ СТЕРИЛИЗАТОРОВ ВОЗДУШНОГО, ПАРОВОГО (АВТОКЛАВА)

Начат "___" __________ 200_ г. Окончен "___" __________ 200_ г.

 

Дата

Марка, N стерилиза- тора воз- душного, парового

Стерилизуемые изделия

Упа- ков- ка

Время стери- лизации (мин.)

Режим

Тест - контроль

Подпись

наиме- нование

коли- чество

начало

конец

дав- ление

темпе- ратура

биологи- ческий

терми- ческий

хими- ческий

 

 

Раздел 9

Безопасность медицинского персонала

Важный момент в профилактике ВБИ у персонала - личная гигиена. К правилам личной гигие­ны относятся: ежедневный душ, при этом особое внимание обращается на волосы и ногти; своевременная смена халатов и другой личной одежды; защита рта и носа (одноразовы­ми средствами защиты) и поворот головы в сторону от находящихся рядом людей при кашле и чихании; соблюдение технологии мытья рук.

Защитная одежда: * Хлопчатобумажная сорочка или костюм: рубашка и брюки; * медицинский халат; * шапочка; * перчатки; * обувь, подлежащая мытью и дезинфекции. * разовая маска. * пластиковые очки или лицевая маска «Барьер»;

Перчатки:

При малейшей возможности контакта с кровью или жидкими выделениями организма, слизи­стыми оболочками или поврежденной кожей любого пациента, а также при наличии порезов или дру­гих повреждений собственной кожи необходимо использование перчаток.

Перчатки следует менять перед каждым пациентом и перед работой с биологическими жидкостями. Использованные перчатки подлежат утилизации. Не допускается использование одной и той же пары перчаток при контакте (для ухода) с двумя и более пациентами, при переходе от одного пациента к другому или от контаминированного микроорганизмами участка тела к чистому. После снятия перчаток проводят обработку рук кожным антисептиком.

Стерильные перчатки надеваются для выполнения асептических процедур.

Последовательность надевания стерильных перчаток:

Ø Взять перчатку за отворот левой рукой так, чтобы пальцы не касались внутренней поверхности перчатки.

Ø Сомкнуть пальцы правой руки и ввести их в перчатку.

Ø Разомкнуть пальцы правой руки и натянуть на" них перчатку, не нарушая ее отворота.

Ø Завести под отворот левой перчатки 2, 3- и 4-й пальцы правой руки, уже одетой в перчатку так, чтобы 1-й палец правой руки был направлен в сторону 1-го пальца на левой перчатке.

Ø Держать левую перчатку 2, 3- и 4-м пальцами правой руки вертикально.

Ø Сомкнуть пальцы левой руки и ввести ее в перчатку.

Ø Расправить отворот левой перчатки, натянув ее на рукав, затем на правой с помощью 2- и 3-го пальцев, подводя их под подвернутый край перчатки.

 

Последовательность снятия перчаток:

Ø Пальцами правой руки в перчатке сделать отворот на левой перчатке, касаясь ее только с наружной стороны.

Ø Пальцами левой руки сделать отворот на правой перчатке, также касаясь ее только с наружной стороны.

Ø Снять перчатку с левой руки, выворачивая ее наизнанку и держа за отворот.

Ø Держать снятую с левой руки перчатку в правой руке.

Ø Левой рукой взять перчатку на правой руке за отворот с внутренней стороны и снять перчатку с правой руки, выворачивая ее наизнанку.

Ø Обе перчатки (левая оказалась внутри правой) поместить в емкость «Отходы класса Б».

 

Маски:

Необходимы для избежания воздушно-капельного переноса микроорганизмов, а также при нали­чии вероятности попадания в рот и нос биологических жидкостей пациентов при работе.

Маски следует заменять, когда они станут влажными. Нельзя опускать их на шею, использовать повторно. Все маски должны полностью закрывать рот и нос.

Порядок снятия маски:

· снять маску, прикасаясь только к завязкам;

· поместить маску в емкость для отходов класса «Б».

Защита для глаз:

Защитные барьеры (щитки, очки) для глаз и лица необходимы, чтобы предохранить глаза от брызг крови или жидких выделений организма. Защитные очки и лицевую маску тщательно моют теплой водой с мылом в конце рабочего дня и протирают насухо стерильной салфеткой. Хранят в шкафу на полке вместе с аптечкой первой помощи.

Халаты и фартуки:

Основная цель халатов и полиэтиленовых фартуков — исключить попадание биологических жидкостей пациентов на одежду и кожу персонала. Смена халата производится ежедневно или чаще, если это необходимо. Запрещается производить стирку халатов на дому.

Порядок снятия халата:

· снять халат вначале с одной руки, касаясь только нижней части рукавов

· снять халат со второй руки, прикасаясь к нему изнутри и выворачивая его наизнанку;

· поместить халат в емкость с маркировкой «Грязное белье»;

Раздел 10

Обработка рук, операционного и инъекционного поля

Оснащение рабочего места:

· Раковина для мытья рук с локтевым смесителем (бесконтактным, педальным смесителем).

· Диспенсер с бумажными разовыми полотенцами.

· Дозатор с жидким мылом.

· Дозатор с кожным антисептиком.

Внимание! Для достижения эффективного мытья и обеззараживания рук необходимо соблюдать следующие условия: коротко подстриженные ногти, отсутствие лака на ногтях, отсутствие искусственных ногтей, отсутствие на руках колец, перстней и других ювелирных украшений!

Ø Перед обработкой рук хирургов необходимо снять также часы, браслеты и пр. Для высушивания рук применяют чистые тканевые полотенца или бумажные салфетки однократного использования, при обработке рук хирургов – только стерильные тканевые.

Ø Медицинский персонал должен быть обеспечен в достаточном количестве эффективными средствами для мытья и обеззараживания рук, а также средствами для ухода за кожей рук (кремы, лосьоны, бальзамы и др.) для снижения риска возникновения контактных дерматитов.

Ø Для мытья рук применяют жидкое мыло с помощью дозатора (диспенсера). Вытирают руки индивидуальным разовым полотенцем (салфеткой).

Ø Гигиеническую обработку рук спиртсодержащим или другим, разрешенным к применению антисептиком, проводят путем втирания его в кожу кистей рук в количестве, рекомендуемом инструкцией по применению, обращая особое внимание на обработку кончиков пальцев, кожи вокруг ногтей, между пальцами.

 

		УРОВНИ ДЕКОНТАМИНАЦИИ РУК
	СОЦИАЛЬНЫЙ УРОВЕНЬ (БЫТОВОЙ) Мытье умеренно загрязненных рук простым мылом и водой уда­ляет с кожи большинство вре­менных микроорганизмов. Социальная обработка рук про­изводится: - перед приемом пищи, кормле­нием больных, работой с про­дуктами питания; - после посещения туалета; - перед и после ухода за пациен­том; - после любого загрязнения рук.		ГИГИЕНИЧЕСКИЙ УРОВЕНЬ (ДЕЗИНФЕКЦИЯ) Мытье рук с использованием спирсодержащих антисепти­оков. Способствует более эф­фективному удалению временных мик­роорганизмов. Гигиеническая обработка проводится: - перед выполнением инвазивных про­цедур; - перед уходом за пациентом с ослаблен­ным иммунитетом; - перед и после ухода за раной и моче­вым катетером; - до и после одевания перчаток; - после контакта с биологическими жид­костями организма или после возмож­ного микробного обсеменения.		ХИРУРГИЧЕСКИЙ УРОВЕНЬ Производится перед любыми хирургическими вмешательства-ми и предполагает специальную обработку pyк. Цель: уничтожение транзиторной флоры и снижение содержа­ния резидентных организмов для предупреждения риска загрязне­ния хирургической раны при повреждении перчаток. Использу­ются разрешенные спиртовые антисептики для обработки рук. Важна определенная методика обезза­раживания рук

 

Порядок обработки рук