Заглавная страница Избранные статьи Случайная статья Познавательные статьи Новые добавления Обратная связь КАТЕГОРИИ: АрхеологияБиология Генетика География Информатика История Логика Маркетинг Математика Менеджмент Механика Педагогика Религия Социология Технологии Физика Философия Финансы Химия Экология ТОП 10 на сайте Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрацииТехника нижней прямой подачи мяча. Франко-прусская война (причины и последствия) Организация работы процедурного кабинета Смысловое и механическое запоминание, их место и роль в усвоении знаний Коммуникативные барьеры и пути их преодоления Обработка изделий медицинского назначения многократного применения Образцы текста публицистического стиля Четыре типа изменения баланса Задачи с ответами для Всероссийской олимпиады по праву Мы поможем в написании ваших работ! ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?
Влияние общества на человека
Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации Практические работы по географии для 6 класса Организация работы процедурного кабинета Изменения в неживой природе осенью Уборка процедурного кабинета Сольфеджио. Все правила по сольфеджио Балочные системы. Определение реакций опор и моментов защемления |
Мультиплексный фосфоресцентный микроанализ
Современные тенденции в развитии методов лабораторной диагностики инфекций связаны с повышением не только чувствительности и специфичности, но и мультиплексности разрабатываемых тестов, то есть возможности одновременного определения нескольких маркеров в одной пробе без разделения последней на отдельные порции. Создание таких тестов является актуальным в связи с существованием «сочетанных» природных очагов и «смешанных» инфекций и составляет основу разработки комплексного подхода к одновременному выявлению всего спектра потенциально возможных заболеваний при проведении скрининговых сероэпидемиологических исследований эндемичных территорий. Для реализации такого подхода возможно использование диагностической технологии на основе фосфоресцентного мультикомпонентного микроанализа (ФОСФАН). В настоящее время разработана биочип-технология ФОСФАН для индикации возбудителей особо опасных инфекций (рис. 20).
Рис. 20. Фосфоресцентный микроанализатор ФОСФАН
В отличие от иммуночипов, формируемых на стекле, предлагаемый подход позволяет одновременно анализировать до 96 образцов и использовать для анализа стандартное оборудование (шейкеры, промыватели и т.п.). Комплект состоит из индикатора фосфоресценции (ИФИС), укладки для отбора проб и набора реагентов (тест-систем) для обнаружения и идентификации возбудителей сибирской язвы, чумы, туляремии, венесуэльского энцефаломиелита лошадей, заболеваний ортопоксвирусной природы, Крымской геморрагической лихорадки, сыпного тифа, клещевой пятнистой лихорадки, токсинов ботулинического типа А и стафилококкового типа В. Принцип построения индикационных тестов универсален. На твердой фазе дна лунки полистиролового микропланшета сорбируют в виде отдельных микрозон специфические АТ. Формирование микрозон осуществляется контактным способом с помощью роботизированных наноплоттеров. Стадии анализа включают инкубацию анализируемой пробы в лунках микропланшета, промывку лунок для удаления не связавшихся компонентов реакции, биоспецифическое связывание выявляемого в пробе патогена или его АГ с индикаторными АТ, конъюгированными с биотином. «Проявление» реакции осуществляют с помощью универсального фосфоресцирующего реагента - конъюгата стрептавидина с Pt копропорфирином. Сигнал фосфоресценции регистрируют при последовательном сканировании отдельных участков дна лунки микропланшета светодиодом с длиной волны излучения 380 нм. Чувствительность системы детекции составляет около 10б молекул Pt копропорфирина в освечиваемой площадке сканирования диаметром около 1 мм. Результаты сканирования регистрируют как число фотоимпульсов от каждой из микрозон. После компьютерной обработки графическая картина распределения сигнала в микрозонах представляется в виде объемных цветных гистограмм или окрашенных пятен. Интенсивность сигнала в виде цветовой шкалы отражает концентрацию патогена в исследуемой микрозоне.
В ходе анализа обеспечиваются требования противоэпидемического режима. Индикатор фосфоресценции размещается в боксированной зоне и управляется радиосвязью через персональный компьютер. После завершения иммунной реакции адсорбированный биоматериал сохраняет стабильный уровень фосфоресценции в течение нескольких месяцев. Это позволяет архивировать микропланшеты и, при необходимости, осуществлять повторное измерение сигнала. Технология ФОСФАН сочетает преимущества твердофазного микропланшетного сэндвич-иммуноанализа с потенциалом биочип-технологий. По сравнению с классическими схемами твердофазного ИФА она имеет ряд очевидных преимуществ благодаря возможности осуществления мультикомпонентного анализа. Микропланшетный формат выгодно отличает ее и от традиционных биочип-технологий на слайдах. Это обусловлено более благоприятными условиями для дозирования проб и реагентов и, как следствие, возможностью создания количественных тестов и многократного повышения производительности лабораторных исследований. Следует также добавить ряд важных экономических моментов, создающих очевидные конкурентные преимущества для данной технологии: уменьшение расхода АТ, используемых для сорбции на твердой фазе (почти в 100 раз); снижение расхода иммунореагентов (конъюгатов, биотинилированных АТ и стрептавидина) в 5-10 раз за счет обработки только дна лунок микропланшета. Благодаря высокой стабильности фосфоресцентной метки, дополнительным преимуществом метода является возможность отсроченного и (или) повторного измерения результатов анализа биоматериала в высушенных и герметично упакованных планшетах, которые могут храниться в архиве в течение длительного периода времени (месяцев, лет).
ПРАКТИЧЕСКИЕ ЗАНЯТИЯ Твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА) Сэндвич-вариант ИФА для обнаружения АГ Принцип метода. Взаимодействие АГ с AT, меченым ферментом. Учет реакции осуществляется измерением ферментативной активности реакционной смеси, что дает возможность оценить количество искомого АГ в исследуемых образцах. Высокая чувствительность ИФА связана с каталитическими свойствами ферментов, одна молекула которых может реагировать с большим количеством (несколько тысяч) молекул субстрата. Реактивы: а) 0,05 М КББ рН 9,6: 5,25 г Nа2СОз и 4,2 г NaHCO3 доводят дистиллированной водой до объема 1 л. На 1 л NaHCO3 требуется 300 мл Nа2СO3. Хранят в холоде не более 2 недель. б) ЗФР рН 7,2: 8 г NaCl, 0,2 г КН2РO4, 0,2 г КС1 и 2,9 г Na2HPO4 ·12Н2O растворяют в 1 л дистиллированной воды, рН доводят КН2РО4. в) Отмывающий раствор: к 100 мл ЗФР рН 7,2 добавляют 50 мкл Твина-20. г) 1 %-ный БСА: в 100 мл ЗФР рН 7,2 растворяют 1 г БСА д) Субстрат: 10 мг дианизидина или диаминобензидина растворяют в 1 мл метанола, добавляют последовательно 99 мл дистиллированной воды и 0,1 мл 3% перекиси водорода. Раствор должен оставаться прозрачным. Готовить в химически чистой посуде! е) Стоп-реагент- 3 %-ный азид натрия: В 100 мл дистиллированной воды растворяют 3 г азида натрия. Материал для исследования в ИФА обрабатывается так же, как для гемагглютинационных методов исследования. Техника проведения анализа: Подготовка твердой фазы: в каждую лунку двух вертикальных рядов микропланшета вносят по100 мкл специфического к искомому АГ иммуноглобулина концентрацией 50 мкг/мл в 0,05 М КББ рН 9,6, закрывают крышкой и помещают в термостат при 37 °С на 2-3 ч, либо на 16-18 ч в холодильник при 4 °С. Перед постановкой реакции раствор АТ из лунок сливают в дез. раствор и трижды отмывают ЗФР-тв, оставляя отмывающий раствор в лунках каждый раз на 2-3 мин. После заключительного отмывания микропланшет встряхивают для избавления от капелек отмывающей жидкости и слегка подсушивают на воздухе. Далее в сенсибилизированные антителом лунки вносят по 100 мкл 1 %-ного раствора БСА для забивки возможных оставшихся свободных участков на твердой фазе, выдерживают 30 мин при 37 °С, после чего планшет освобождают от раствора инертного белка и трижды промывают ЗФР-тв. Отмывающую жидкость удаляют, в каждую подготовленную лунку вносят по 100 мкл ЗФР-тв, затем в 3-ю лунку первого вертикального ряда добавляют 100 мкл исследуемого материала и титруют в объеме 100 мкл, перенося из 1-ой лунки во 2-ю, из 2-ой в 3-ю и т.д. до 7 лунки второго вертикального ряда включительно, из которой 100 мкл раствора раститрованного АГ удаляют в дез. раствор. 8 лунка второго вертикального ряда – положительный контроль - заведомо известное количество положительного АГ. Первые две лунки первого вертикального ряда – отрицательный контроль - гетерологичный АГ, либо суспензия органов от здоровых животных, или иной материал, не содержащий специфический АГ. После часовой инкубации при 37 °С содержимое лунок удаляют в дез.раствор и трижды отмывают ЗФР-тв, как сказано ранее. Затем во все лунки добавляют по 100 мкл рабочего разведения раствора конъюгата (специфические АТ=Фермент). Инкубируют 1 ч при 37 °С, трижды отмывают ЗФР-тв. После заключительного отмывания в каждую лунку вносят по 100 мкл раствора субстрата. Реакцию проводят 15-30 мин при комнатной температуре, после чего в каждую лунку добавляют по 1 капле стоп-реагента. При положительном результате в лунках развивается оранжево-коричневое окрашивание. В отрицательном – раствор прозрачен.
Непрямой вариант ИФА для обнаружения АТ Техника проведения анализа: Подготовка твердой фазы: в каждую лунку двух вертикальных рядов микропланшета вносят по100 мкл раствора АГ концентрацией 50 мкг/мл в 0,05 М КББ рН 9,6, закрывают крышкой и помещают в термостат при 37 °С на 2-3 ч, либо на 16-18 ч в холодильник при 4 °С. Перед постановкой реакции раствор АГ из лунок удаляют в дез. раствор и трижды отмывают ЗФР-тв, оставляя отмывающий раствор в лунках каждый раз на 2-3 мин. После заключительного отмывания микропланшет встряхивают для избавления от капелек отмывающей жидкости и слегка подсушивают на воздухе. Далее в сенсибилизированные антигеном лунки вносят по 100 мкл 1 %-ного раствора БСА для забивки возможных оставшихся свободных участков на твердой фазе, выдерживают 30 мин при 37 °С, после чего планшет освобождают от раствора инертного белка и трижды промывают ЗФР-тв. Отмывающую жидкость удаляют, в каждую подготовленную лунку вносят по 100 мкл ЗФР-тв, затем в 3-ю лунку первого вертикального ряда добавляют 100 мкл исследуемой сыворотки (разведенной заранее ЗФР-тв 1:100) и титруют в объеме 100 мкл, перенося из 1-ой лунки во 2-ю, из 2-ой в 3-ю и т.д. до 7 лунки второго вертикального ряда включительно, из которой 100 мкл раствора раститрованной сыворотки удаляют в дез. раствор. 8 лунка второго вертикального ряда – положительный контроль - заведомо положительная сыворотка больного человека или животного. Первые две лунки первого вертикального ряда – отрицательный контроль - гетерологичная сыворотка, либо сыворотка от здоровых животных или человека. После часовой инкубации при 37 °С содержимое лунок удаляют в дез.раствор и трижды отмывают ЗФР-тв, как сказано ранее. Затем во все лунки добавляют по 100 мкл рабочего разведения раствора конъюгата (антивидовые АТ=Фермент). Инкубируют 1 ч при 37 °С, трижды отмывают ЗФР-тв. После заключительного отмывания в каждую лунку вносят по 100 мкл раствора субстрата. Реакцию проводят 15-30 мин при комнатной температуре, после чего в каждую лунку добавляют по 1 капле стоп-реагента. При положительном результате в лунках развивается оранжево-коричневое окрашивание. В отрицательном – раствор прозрачен.
Учет и оценка результатов ИФА: Учет результатов реакции можно проводить визуально и инструментально (с помощью ИФА-ридера). Визуально реакцию учитывают по наличию соответствующего окрашивания содержимого лунок в опытных пробах и положительном контроле и отсутствию такового в отрицательных контролях. При наличии слабого окрашивания в отрицательных контрольных образцах (что иногда имеет место при технических погрешностях: некачественной отмывке лунок планшета, использовании концентрированного раствора конъюгата, загрязнении субстрата и т. д.) реакцию учитывают по разнице в окраске отрицательных контрольных и опытных проб. Инструментальный учет результатов реакции осуществляют на ИФА - ридерах, определяя оптическую плотность продукта реакции фермент-субстрат при соответствующей длине волны. Оптическая плотность положительных образцов должна как минимум в 1,5 - 2 раза превышать таковую в контрольных пробах.
|
||||||||
Последнее изменение этой страницы: 2016-12-30; просмотров: 451; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы! infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 3.142.198.129 (0.011 с.) |