Заглавная страница Избранные статьи Случайная статья Познавательные статьи Новые добавления Обратная связь КАТЕГОРИИ: АрхеологияБиология Генетика География Информатика История Логика Маркетинг Математика Менеджмент Механика Педагогика Религия Социология Технологии Физика Философия Финансы Химия Экология ТОП 10 на сайте Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрацииТехника нижней прямой подачи мяча. Франко-прусская война (причины и последствия) Организация работы процедурного кабинета Смысловое и механическое запоминание, их место и роль в усвоении знаний Коммуникативные барьеры и пути их преодоления Обработка изделий медицинского назначения многократного применения Образцы текста публицистического стиля Четыре типа изменения баланса Задачи с ответами для Всероссийской олимпиады по праву Мы поможем в написании ваших работ! ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?
Влияние общества на человека
Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации Практические работы по географии для 6 класса Организация работы процедурного кабинета Изменения в неживой природе осенью Уборка процедурного кабинета Сольфеджио. Все правила по сольфеджио Балочные системы. Определение реакций опор и моментов защемления |
Диагностика особо опасных заболеваний
Основные методы диагностики особо опасных заболеваний, на которые опираются ветеринарные врачи – это клинические проявления, эпизоотологическая ситуация, патологоанатомические данные, но самое важное это лабораторные диагностики. Где с уверенностью можно поставить достоверный и точный диагноз на заболевания. Для карантинных и особо опасных заболеваний существует межгосударственные стандарты, по которым ветеринарные лаборатории и ветеринарные научно-исследовательские учреждения обязаны следовать по этим указаниям [52]. Но и методы лабораторных диагностик различны и разнообразны, к примеру, для диагностики африканской чумы свиней используют такие методы как: 1) Метод отбора проб; 2) Метод прямой иммунофлуоресценции; 3) Метод выделения и идентификации вируса АЧС; 4) Метод постановки биологической пробы; 5) Метод обнаружения вируса АЧС в реакции аутогемадсорбции; 6) Метод непрямой иммунофлуоресценции; 7) Метод иммуноферментного анализа [52]. На основание ГОСТ 26075-2013.Методы лабораторной диагностики бешенства (принят Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации, протокол № 57-П от 27.06.2013). Введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 01.01.2015 (взамен ГОСТ 26075-84 был введен в действие 01 июля 1984): 1) метод флуоресцирующих антител; 2) метод выделения вируса бешенства в культуре клеток мышиной нейробластомы CCL-131 (или невриномы Гассерова узла крысы - НГУК-1); 3) биопроба на белых мышах; 4) метод иммуноферментного анализа; 5) реакция диффузионной преципитации [53]. Для диагностики в лабораторию направляют: от мелких животных (кошки, лисицы, теленок и т.д.) свежий труп или целую голову, от крупных животных – голову либо свежий или консервированный в 30 – 50% растворе глицерина головной мозг (аммоновы рога, мозжечок и т.д.), с целью обнаружению телец Бабеша-Негри и специфического рабического антигена[53,54 с.72]. На основании Приказа Министерства сельского хозяйства Российской Федерации от 25.11.2020 № 706 «Об утверждении Ветеринарных правил осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов блютанга» применяют такие методы как:
1) конкурентный иммуноферментный твердофазный анализ с использованием моноклональных клеток, специфичных к различным серотипам возбудителя; 2) реакция вируснейтрализации в культуре клетке; 3) нуклеотидное секвенирование [55 c.16] Современные методы диагностики: стандарты oie, 2008 – идентификация антигена, · реакция иммунодиффузии в агаровом геле (РДП), иммуноферментный анализ (ИФА); · полимеразная цепная реакция (ПЦР); · «Блютанг – серотест»: метод двойного распознавания антител к BTV в сыворотке крови жвачных [66]. На основании Приказ Минсельхоза РФ от 03.04.2006 N 105 «Об утверждении Ветеринарных правил лабораторной диагностики гриппа А птиц», устанавливают обязательные требования проведения лабораторной диагностики [56]. Для исследования отбираются пробы патологического материала (ткани головного мозга, селезенка, сердце, почки, участки кишечника и т.д.) от павшей птицы, так же используют клоакальный или же трахеальные смывы, помет птиц, производят отбор крови [56]. Для обнаружения и установки диагноза применяют следующие методы: a) для выявления вируса гриппа птиц – биопроба на СПФ (свободных от патогенной микрофлоры) – цыплятах с обязательным последующим подтверждением специфичности биологической реакции; b) для выделения вируса гриппа птиц – метод выделения вируса на СПФ – куриных эмбрионах или в культуре клеток; c) для обнаружения антигенов вируса гриппа птиц; 1) иммуноферментный анализ (ИФА) для обнаружения одного или нескольких белков вируса; 2) иммунопреципитация (двойная иммунодиффузия по Оухтерлони (далее - РДП) или иммуноэлектроосмофорез (далее – ИЭОФ); 3) иммунохроматографические методы (далее – ИХА); 4) радиоиммунный анализ (далее – РИА); 5) реакция связывания комплемента (далее – РСК); d) для обнаружения гемагглютинина (гемагглютинирующей активности) вируса гриппа птиц: 6) реакция гемагглютинации (далее – РГА) с подтверждением специфичности в реакции торможения гемагглютинации (РТГА); 7) ИФА на основе моноспецифических сывороток или моноклональных антител к вирусному гемагглютинину;
e) для обнаружения РНК вируса: 8) полимеразная цепная реакция (далее – ПЦР); 9) ПЦР с последующим секвенированием ее продуктов; f) для обнаружения антител к вирусу гриппа птиц: 10) ИФА; 11) РДП и ИЭОФ; 12) ИХА; 13) РИА; 14) РТГА; 15) РСК; g) для субтипирования вируса по гемагглютинину и нейраминидазе: 16) РТГА; 17) ПЦР [56]. При оспе овец и коз отбора патологического материала для исследования от больных, павших или вынуждено убиты животных необходимо брать не позже 2 – 4 часов. Отбирают смывы из везикул, пастул, так же кожные поражения, кусочки на границе изменённых внутренних органов. Используют методы: 1) Вирусоскопия (приготовленные мазки окрашивают по М. А. Морозову для обнаружения элементарных телец оспы); 2) Биопроба для выделения и накопления вируса оспы; 3) Реакция диффузионной преципитации; 4) Реакция иммунофлуоресценции [58]. На основании государственного санитарно – эпидемиологического нормирования РФ для исследования на сап не только животных, но и человека проводится бактериологическим, биологическим и серологическим методом. Материалом у лошадей с подозрением на сап служат выделения из носа, отделяемое язв, пунктаты, испражнения. От павших животных берут для анализа кусочки органов: селезенка, печень, легкое, кровь, костный мозг [58]. Используемые методы: I.Бактериологический метод: 1) Для выделения возбудителя сапа используют мясопептонный агар и бульон pH 6,8 - 7,0 с 4 % глицерина (МПГА, МПГБ); II.Биологический метод: 2) Биопроба на золотистых хомячках или морских свинках; 3) Аллергической пробы с маллеином; III.Иммунологические методы исследования: 4) Реакция непрямой гемагглютинации; IV.Серологическая диагностика: 1) Реакция непрямой гемагглютинации; 2) Реакция агглютинации; 3) Реакция связывания комплемента; V. Молекулярно – генетические методы исследования: 4) Обеззараживание проб для исследования методом ПЦР; 5) Выделение ДНК; 6) Проведение ПЦР для специфической индикации и идентификации возбудителя сапа [58]. Разберем сибирскую язву, как всем хорошо известно при подозрение вскрытие трупов категорически запрещено. И поэтому основным методом исследования будет служить бактериологический. Производят отбор крови с поверхностных кровеносных сосудов уха, хвоста, конечностей, за исключением для исследования берут ухо на котором лежало животное. У МРС доставляют целую тушу. У свиней как правило в крови не обнаруживается возбудитель, поэтому вырезается заглоточные, подчелюстные лимфоузлы [59]. Рассмотрим все методы для выявления возбудителя: I. Выявление капсул: 1) Метод Михина (окрашивают щелочной синькой Лоффлера) 2) Метод Ольта (капсула бледно – желтая) 3) Метод Антонии (капсула сине – фиолетова) 4) Метод Романовского – Гимзы (капсула розовая) 5) Метод Редигера (красно – фиолетовая) 6) Метод Гинса (капсула бледно – голубая) II. Выявление спор: 7) Метод Меллера (споры окрашены в розово – красный цвет) 8) Метод Вальдмана (споры синие) 9) Метод Пешкова (споры синие) 10) Метод Ауески (споры красные) 11) Метод Шеффера – Флутона (споры зеленые) III. Так же ставятся биологические пробы на животных IV. Серологические исследования 12) Реакция преципитации по Асколи 13) Реакция диффузной преципитации 14) Метод флюоресцирующих антител
15) Иммуноферментный анализ [60 c.58] Перейдем к Чуме КРС, для лаборатории доставляют образцы: выделения из носа или глаз в эрозивной фазе, так же цельную кровь с гепарином, предлопаточные лимфоузлы или селезенка [42 с. 40]. Идентификация вируса: 1. выявление антигена: 1) РДП; 2) прямой и непрямой иммунопероксидазный метод; 3) иммуноэлектрофорез; 4) иммуногистопатологическое исследование; 5) изоляция вируса; 6) реакция нейтрализации; 7) окрашивание иммунопероксидазным методом; Определение вирусной РНК:специфические кДНК-зонды; 2. ПЦР. Серологические тесты: 3. реакция нейтрализации; 4. ИФА [42 с.39]. Ящур на основании ГОСТ 25384-82 для проб используют: содержимое афт у КРС – на слизистой оболочке языка, у свиней – на пяточке или же одинаковой для каждого животного – на коже венчика или межпальцевой щели. Для ретроспективных исследований отбирают пищеводно-глоточную слизь [61]. 1. Серологический метод 1) реакции связывания комплемента; 2. Методы выявления вируса 2) культуры монослойные первичных клеток почки свиней (СП), телят, взрослого крупного рогатого скота (ВП) и ягнят (ПЯ) и перевиваемых линий ВНК-21 и IB-RS-2 3) Постановка биопробы на животных (морские свинки, мышата 3 – 6 дневного возраста) [61]. Чума МРС возможно то что же что и чума крс – проверить уточнить!!!!!!!
Чума верблюдов бактерия Y. pestis сходна и для человека. В лабораторию для бактериологического исследования направляют: трупы грызунов, гной из бубонов, мокроту, кровь, и для работы с чумным материалом разрешена только в специализированных лабораториях [62]. Бактериологическое исследование включает: 1) обнаружение возбудителя в исходном материале методом световой микроскопии Ускоренные методы: 2) иммунофлуоресценцию 3) реакцию торможения пассивной гемагглютинации 4) РДП Биопроба на морских свинках [62].
|
|||||||
Последнее изменение этой страницы: 2021-07-19; просмотров: 86; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы! infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 18.222.138.230 (0.017 с.) |