ПРИГОТОВЛЕНИЕ МОЮЩЕГО РАСТВОРА ДЛЯ РУЧНОЙ ОЧИСТКИ



Мы поможем в написании ваших работ!


Мы поможем в написании ваших работ!



Мы поможем в написании ваших работ!


ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?

ПРИГОТОВЛЕНИЕ МОЮЩЕГО РАСТВОРА ДЛЯ РУЧНОЙ ОЧИСТКИ



Таблица 2

Наименование компонентов Концентрация Количество Температура раствора
Вода дистиллированная   995 мл 40-45° С
Моющее средство "Биолот"    
Вода дистиллированная   975 мл  
Раствор пергидроля 33% 20 г 50-55° С
Моющее средство "Аст­ра", "Айна", "Лотос"    
Моющее средство "Аст­ра", "Айна", "Лотос"    
Перекись водорода 3% 170 мл 50-55° С
Вода дистиллированная   долить до 1 л раствора  

Примечание: допускается применение моющего раствора до появления розовой окраски, но не более суток.

Неизмененный моющий раствор можно подогревать до 6 раз.

Температура раствора контролируется водным термометром.

Раствор моющего средства "Биолот" используется одно­кратно, так как фермент быстро разрушается. При использова­нии раствора, содержащего 0,5% Н2О2 и 0,5% "Лотос", приме­няют ингибитор коррозии: 0,14% раствор олеата натрия (1,4 г на 1 л воды).

Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

•На наличие крови:

- амидопириновая проба

- азопирамовая проба

• На наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего препарата:

- фенолфталеиновая проба

Контролю подвергают 1% от одновременно обработанного ма­териала.

Контроль качества предстерилизационной очистки изделий для медицинского назначения с помощью реактива АЗОПИРАМА (Ме-тодические указания от 26 мая 1988 г., Ленинград, 1988 г.).

I. Общая часть.

1. Проба с азопирамом по чувствительности не уступает бензи-диновой и в 10 раз превышает амидопириновую.

2. С введением данных указаний бензидиновая и ортотолуиди-новая пробы отменяются.

3. Реактив азопирам используется для выявления открытых следов крови, которые могли остаться на подготовленных к стери­лизации медицинских изделиях в результате недостаточно тща­тельной предстерилизационной очистки.

4. Контроль предстерилизационной очистки проводит СЭС 1 раз в квартал. Самоконтроль в ЛПУ проводится не реже 1 раза в неделю, организуется и контролируется старшей медсестрой отде­ления.

фенолфталеиновая II. Методика определения качества предстерилизационной очи­стки изделий с помощью реактива АЗОПИРАМА.

1. Реактивы: амидопирин в порошке, солянокислый анилин, 3% перекись водорода, 95% этиловый спирт, вода дистиллированная. Вода используется для приготовления 3% перекиси водорода.

2. Приготовление исходных растворов. На 1 л раствора отве­шивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина. Ве­щества смешивают в сухой посуде и заливают 95% этиловым спир-256

том до объема 1 л. Смесь тщательно перемешивают палочкой до полного растворения всех ингредиентов. Таким образом, азопирам содержит 10% амидопирина, 0,10-0,15% солянокислого анилина, остальное - 95% этиловый спирт.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытых флако­нах в темноте при температуре 4° С (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре 18-23° С не более месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпаде­ния осадка не снижает его рабочих качеств.

При небольшом объеме исследований азопирам готовят пор­циями по 50-200 мл. Окислителем в реакции индикации является 3% р-р перекиси водорода.

III. Приготовление рабочего раствора. Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий

готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% перекиси водорода.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяется в слу­чае необходимости: 2-3 капли этого раствора наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 минуту, появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив приго­ден к употреблению. Если окрашивание в течение 1 минуты не по­является, реактивом пользоваться нельзя.

IV. Исследование качества предстерилизационной очистки из­делий.

Методика постановки реакции.

Рабочим раствором (азопирам с 3% перекисью водорода в со­отношении 1:1) обрабатывают исследуемые изделия: протирают тампонами, смоченными реактивом или наносят несколько капель реактива на исследуемые изделия с помощью пипетки.

В шприцы наливают 3-4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внут­реннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив в шприце остав­ляют на 0,5-1,0 минуту, после чего реактив вытесняют на марлевую салфетку.

При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый шприц и, последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая 3-4 капли на марлевую салфетку. Контролю под­вергают 1% от одновременно обработанных изделий одного наиме­нования, но не менее 3-5 единиц.

V. Индикация загрязнений.

В присутствии следов крови немедленно или не позднее чем через минуту после контакта реактива с загрязненным участком появляется окрашивание - вначале фиолетовое, затем быстро, в те­чение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или бу­роватое.

Окрашивание, наступившее позже чем через 1 минуту после обработки исследуемых предметов, не учитывается.

Азопирам выявляет наличие гемоглобина, пероксидаз расти­тельного происхождения, окислителей (хлорамина, хлорной из­вести, стирального порошка и других), а также ржавчины и ки­слот.

Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на иссле­дуемых предметах ржавчины и хлорсодержащих окислителей. В остальных случаях окрашивание розово-сиреневое.

VI. Особенности реакции.

Исследуемые изделия должны иметь комнатную температуру. Нельзя подвергать проверке горячие изделия, а также держать ра­бочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре.

Рабочий раствор (азопирам с перекисью водорода) должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание рас­твора. Если это окрашивание мешает работе, а исследование не­обходимо продолжить, следует заменить порозовевший раствор свежим.

После проверки, независимо от ее результатов, следует удалить остатки азопирама с исследованных изделий, обмыв их водой или протерев тампоном, смоченным водой или спиртом, а затем повто­рить предстерилизационную очистку этих изделий.

VII. Меры предосторожности.

Среди реактивов, использующихся при приготовлении и при­менении азопирама, осторожного обращения требуют солянокис­лый анилин, пергидроль и этиловый спирт.

Рассыпанные или пролитые реактивы удаляют, а место, где они находились, промывают или протирают тампонами, смоченными водой или спиртом.

Азопирам горюч, так как в его состав входит спирт.

Амидопириновая проба

Пипеткой наносят реактив (1 % раствора амидопирина) на поршень и в цилиндр шприца, а через него в иглу. Если после пред­варительных этапов ПО осталась кровь, происходит немедленное окрашивание реактива в сине-зеленый цвет (положительная проба). Окрашивание, появившееся позже чем через 2 мин, не учитывается.

Фенолфталеиновая проба

С помощью этой пробы можно проверить, как отмыты шприцы от моющего раствора. Вымытые детали шприца протирают ватой, смоченной 1% спиртовым раствором фенолфталеина. При наличии остатков моющего раствора в течение 30 сек появляется сине-фиолетовое окрашивание. Если проба положительная, следует по­вторить промывание под холодной водой.

Примечание: при использовании моющих средств "Прогресс", "Биолот" проба не применяется.

Дезинфекция и утилизация одноразовых шприцев и игл После выполнения инъекции одноразовые шприцы замачивают в разобранном виде в растворе 3 % хлорамина на 60 мин. После этого промывают проточной водой, высушивают и сдают старшей медсестре отделения.

Дезинфекция и утилизация одноразовых систем для внутри­венного введения лекарств.

После проведения манипуляции система разрезается на три части и замачивается в растворе 3% хлорамина на 60 минут. После этого промывается проточной водой и выбрасывается.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ

ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ

1. Предстерилизационная очистка имеет________этапов.

2. При положительной амидопириновой пробе появляется окраши­вание:

а) сине-зеленое

б) фиолетовое

в) розовое

г) черное

3. Для проведения Ш этапа предстерилизационной очистки использу­ется вода:

а) проточная

б) дистиллированная

в) прокипяченная

г) дважды дистиллированная

4. Установите правильное соответствие:

1. Следы крови         А. Фенолфталеиновая проба

2. Остатки моющего Б. Азопирамовая проба раствора                  

                                    В. Ортотолуидиновая проба

5.Установите правильную последовательность этапов предстери­лизационной очистки:

а) промывание проточной водой после моющего раствора

б) промывание дистиллированной водой

в) замачивание в моющем растворе

6. Моющий раствор со средством "Биолот" используется________.

7. Предстерилизационная очистка проводится процедурной медсе­строй в______________.

8. Для приготовления моющего раствора на 1 л берется____г мою-

щего средства.

9. Для уборки процедурной использовать уборочный инвентарь для уборки палат_________.

10. Замачивание шприцев в растворе 3% хлорамина проводят для

11. Для приготовления моющего раствора на 1 л берется моющего

средства:

а) 5 г

б) 50 г

в) 15 г

г) 10 г

12. Использованные системы для внутривенных вливаний перед утилизацией необходимо________________________.

13. Замачивание шприцев в моющем растворе - это предстерилизационной очистки.

14. Фенолфталеиновая проба проводится для определения:

а) остатков масляного раствора

б) остатков крови

в) остатков моющего раствора

г) остатков лекарственного средства

15. Для проведения VII этапа ПО используется_______ вода.

16. Установите правильную последовательность этапов предстерилизационной очистки:

а) промывание в проточной воде

б) промывание водой в отдельной емкости

в) замачивание в растворе хлорамина

17. Для предстерилизационной очистки используют____% раствор

хлорамина.

18. Для контроля качества предстерилизационной очистки используется

% изделий от всей партии.

19. Моющий раствор с использованием моющего средства "Лотос" при­меняется:

а) в течение суток, нагревается до 6 раз

б) в течение суток, до появления фиолетовой окраски

в) в течение суток, до появления розовой окраски

г) в течение суток, нагревать можно до 6 раз, до появления розовой

окраски

20. Генеральная уборка процедурного кабинета проводится 1 раз в

МАНИПУЛЯЦИИ

· Проведение предстерилизационной очистки шприцев и игл по­этапно.

· Проведение азопирамовой пробы.

· Проведение амидопириновой пробы.

· Проведение фенолфталеиновой пробы.

ОСНАЩЕНИЕ РАБОЧЕГО МЕСТА

(занятие проводится в доклиническом процедурном кабинете)

Растворы: 3% хлорамина, пергидроля, азопирама, фенолфта­леина, амидопирина, 3% перекиси водорода.

Оборудование: термометр, шприцы, иглы, мерная посуда, от­дельные емкости (ванночки, бачки), пипетки, салфетки.

Моющие средства: "Лотос", "Биолот", "Айна", "Астра".

УЧЕБНЫЙ МОДУЛЬ 14

ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ.

ИНФЕКЦИОННЫЙ КОНТРОЛЬ

Стерилизация. Виды и режимы стерилизации. ЦСО.

УЧЕБНЫЕ ЦЕЛИ

Студенты должны ЗНАТЬ:

• определение стерилизации и ее сущность;

• устройство ЦСО;

• цели, задачи и принципы ЦСО;

• режим стерилизации горячим воздухом;

• режим стерилизации водяным паром под давлением;

• виды упаковок;

УМЕТЬ:

▲ упаковать шприцы и иглы в крафт-пакет;

▲ упаковать шприцы и иглы в мягкую бязевую упаковку;

▲ упаковать в открытую емкость;

▲ упаковать для стерилизации резиновые изделия.

ВОПРОСЫ ДЛЯ САМОПОДГОТОВКИ

1. Дать определение "стерилизации".

2. Документ, оговаривающий все режимы и допуски методов стери­лизации.

3. Дать определение "ЦСО".

4. Устройство ЦСО.

5. Режим стерилизации в автоклаве металлического инстру­ментария.

6. Режим стерилизации в автоклаве резиновых изделий.

7. Виды упаковки, используемые для стерилизации в автоклаве.

8. Виды упаковки, используемые при стерилизации в сухожа-ровом шкафу.

9. Режим стерилизации в сухожаровом шкафу.

ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ

Стерилизация - это полное уничтожение (обеззараживание) микроорганизмов и их спор на инструментарии, перевязочном ма­териале.

Любые предметы, применяемые при лечении и уходе за паци­ентами, если они не будут полностью обеззаражены, могут привес­ти к инфицированию других людей. Использование недостаточно простерилизованного инструментария может вызвать развитие сы­вороточного гепатита, инфицирование ВИЧ, стафилококковой и другими инфекциями.

У нас в стране введен отраслевой стандарт "Стерилизация и де­зинфекция изделий медицинского назначения" (ОСТ 42-21-2-85). Этим стандартом установлены методы, средства и режимы дезин­фекции и стерилизации.

Для пациентов, перенесших вирусный гепатит, в процедурном кабинете выделяют отдельные шприцы и иглы, которые проходят предстерилизационную очистку и стерилизацию отдельно от всех остальных шприцев и игл. В процедурном кабинете должен быть список находящихся в отделении пациентов, перенесших вирусный гепатит.

Для масляных шприцев и игл существуют свои крафт-пакеты или двухслойная бязевая упаковка. Шприцы для введения масляных растворов с остальными шприцами не смешивают. При сдаче в ЦСО для стерилизации процедурная медсестра указывает упаковки с масляными шприцами, так как они укладываются отдельно.

Все катетеры и зонды подвергаются стерилизации только цен­трализованно, в связи с указаниями по профилактике СПИДа. Пе­ред стерилизацией проводится первых три этапа предстерилизационной очистки.

Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекцион­ными препаратами и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой обо­лочкой и могут вызвать ее повреждение. Стерилизацию проводят после предстерилизационной очистки.



Последнее изменение этой страницы: 2021-04-04; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы!

infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 3.235.227.117 (0.029 с.)