Заглавная страница Избранные статьи Случайная статья Познавательные статьи Новые добавления Обратная связь КАТЕГОРИИ: АрхеологияБиология Генетика География Информатика История Логика Маркетинг Математика Менеджмент Механика Педагогика Религия Социология Технологии Физика Философия Финансы Химия Экология ТОП 10 на сайте Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрацииТехника нижней прямой подачи мяча. Франко-прусская война (причины и последствия) Организация работы процедурного кабинета Смысловое и механическое запоминание, их место и роль в усвоении знаний Коммуникативные барьеры и пути их преодоления Обработка изделий медицинского назначения многократного применения Образцы текста публицистического стиля Четыре типа изменения баланса Задачи с ответами для Всероссийской олимпиады по праву Мы поможем в написании ваших работ! ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?
Влияние общества на человека
Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации Практические работы по географии для 6 класса Организация работы процедурного кабинета Изменения в неживой природе осенью Уборка процедурного кабинета Сольфеджио. Все правила по сольфеджио Балочные системы. Определение реакций опор и моментов защемления |
Проведения III-его этапа бактериологического исследования
с целью выделения гемофилов: 1. Проверьте однородность выделенной чистой культуры, сделайте мазок со скошенного СПА, окрасьте по Граму – Синеву, изучите под микроскопом, зарисуйте в дневник и сделайте заключение. Заключение: 2. Ставят тест на способность к продукции цитохромоксидазы: материал исследуемой суточной агаровой культуры наносят на фильтровальную бумагу и добавляют 1 каплю 1%-ного свежеприготовленного водного раствора тетраметилпарафенилен -диамина гидрохлорида; при наличии цитохромоксидазы спустя 5-10 секунд развивается пурпурное окрашивание. В качестве позитивного контроля компонентов реакции следует использовать суточную агаровую культуру любой псевдомонады, в качестве негативного – кишечной палочки. Тест может быть выполнен непосредственно на поверхности чашки: в этом случае 1 капля реактива наносится на исследуемую колонию и учет результатов аналогичным образом производится спустя 23-30 сек. Результат:_________________________________________________________ Заключение:_______________________________________________________ 3. Ставят тест на способность к продукции каталазы: материал исследуемой суточной агаровой культуры суспензируют на поверхности предметного стекла в капле 3%- ного раствора перекиси водорода; спустя 3-5 сек во взвеси каталазапозитивной культуры происходит интенсивное газообразование. В качестве позитивного контроля следует использовать суточную культуру кишечной палочки, негативного – любого стрептококка. Результат:_________________________________________________________ Заключение:______________________________________________________ 4. Ставят тест на b- галактозидазу: в стерильные агглютинационные пробирки разливают по 0,5 мл раствора b - галактозидазы и вносят одну петлю культуры, инкубируют 37° С 2- 4 часа и появление ярко-желтого окрашивания за счет о-нитрофенола. Результат:_________________________________________________________ Заключение:_______________________________________________________ 5.Ставят тест на определение индолообразования: пробирки с питательным бульоном засевают одну петлю культуры и добавляют 2-3 капли инактивированной лошадиной сыворотки, под пробку помещают индикаторную бумажку на индол. При образовании индола при инкубации 37°С 18-24 часа,появляется розовое окрашивание индикаторной бумажки. Результат:_________________________________________________________
Заключение:_______________________________________________________ 6. Ставяттест на определение уреазы: в пробирки по 0,1 мл и вносят несколько капель густой суспензии исследуемой культуры в питательном бульоне, инкубируют 37оС, 30 мин, среда приобретает малиново-красное окрашивание. Учет отрицательной реакции после 24 часов инкубации, цвет среды не изменяется. Результат:_________________________________________________________ Заключение:_______________________________________________________ 7. Ставят тест на наличие орнитиндекарбоксилазы: диски с орнитином помещают в пробирку с 0,3–0,5 мл физиологического раствора и добавляют несколько капель суточной бульонной культуры, после чего заливают стерильным вазелиновым маслом и инкубируют 37оС 18–24 часа, появляется синее или интенсивное зеленое окрашивание. Результат:________________________________________________________ Заключение:______________________________________________________ 8. Ставят тест на определение потребности для роста X и Y факторов: приготовленная суспензия суточной культуры в питательном бульоне, засевают на 5% кровяной агар, на поверхность среды кладут стандартные диски или полоски, пропитанные X и Y факторами, на расстояние 2 см друг от друга. Инкубируют 37оС в атмосфере18–24 часа с 5–10% СО2. Учет характера роста производится визуально. Интенсивный рост бактерий вокруг дисков или полосок подтверждает наличие гемофилов. 9. Реакция определения феномена «набухания капсулы»: всвежевыделенной мокроте устанавливают набухание капсулы при воздействии соответствующих диагностических агглютинирующих сывороток, основано на появлении феномена набухания капсулы. 10. Определение чувствительности выделенной культуры к антибиотикам методом диффузии в агаре на среде Мюллера-Хинтона с добавлением 5% дефибринированной крови человека, разлитой по чашкам с толщиной слоя агара 4 мм. Перед посевом подсушить чашки с приоткрытыми крышками при +25±50С. Готовые чашки хранить не более 7 дней в холодильнике, в запаянном полиэтиленовом пакете. Берут 18-20-часовую агаровую культуру. В стерильном ИХН суспензируют 5-10 изолированных колоний и доводят до 0,5 мутности по оптическому стандарту Mc Farland. Стерильный ватный тампон поместить в пробирку с инокулятом. Излишнюю жидкость с тампона убрать путем покручивания тампона, прижатого к стенке пробирки над уровнем жидкости в разные стороны. Посев культуры на каждую чашку произвести штрихообразным движением по всей поверхности агара трижды, каждый раз после аппликации поворачивая чашку вокруг своей оси на 600. В заключении тампоном обводят по краям агаровой поверхности. Диски с помощью стерильного пинцета наложить на поверхность засеянной питательной среды на расстоянии от края чашки 1,5-2см и на одинаковом расстоянии (около 3 см) друг от друга, не более 6-7 дисков на чашку, слегка прижимая их к поверхности среды. Сразу после наложения дисков чашки закрыть крышками и инкубировать при 370С 24 часа. Чашки извлечь из термостата, поместить кверху дном на темную матовую поверхность так, чтобы свет настольной лампы падал на них под углом в 450 (учет в отраженном свете). При измерении зон задержки роста следует ориентироваться на полную ингибицию видимого роста.
Рекомендуемые диски с антибиотиками: ципрофлоксацин, тетрациклин, хлорамфеникол, амоксициллин, меропенем, цефтазидим. Учтите результаты по демонстрационной пробе и сделайте заключение с учетом результатов всех тестов идентификации выделенного штамма. Результат пробы на антибиотики: (см. Приложение №5) 1._________________________________________________________________
2.______________________________________________________________
3.________________________________________________________________
4. ____________________________________________________________
5._____________________________________________________________
6._________________________________________________________________ Заключение: Задание 8 1. Изучите экспресс – методы обнаружения капсульного антигена (латекс-агглютинация, коагглютинация со стафилококковым протеином А, реакция встречного иммуноэлектрофореза). Вспомогательный метод диагностики менингококковой инфекции - реакции непрямой (пассивной) гемагглютинации Для диагностики заболеваний, вызванных палочкой инфлюэнцы, используют РИФ. В настоящее время предложены иммунологические методики выявления капсульного антигена H. influenzae типа b в ликворе, крови, плевральной жидкости и моче: латекс-агглютинация, коагглютинация со стафилококковым протеином А, встречный иммуноэлектрофорез. Реакция латекс - агглютинации (экспресс-метод) Метод латекс - агглютинации, позволяющий в течение 15 мин дать заключение об отсутствии или наличии в спинномозговой жидкости больного специфических антигенов. Реакцию проводят при наличии признаков гнойного воспаления в ликворе и при бактериоскопическом обнаружении в нем возбудителей. Предварительно спинномозговую жидкость необходимо прогреть в течение 5 мин при 100 °С и центрифугировать при 1500 - 2000 об./мин. Для проведения реакции используют прозрачную надосадочную жидкость. Ход исследования: одну каплю каждого латексного реактива (предварительно реактивы рекомендуется тщательно встряхнуть) наносят на специальные бумажные карты, приложенные к набору, добавляют 0, 3 мл спинномозговой жидкости (надосадочная фракция). Перемешивают чистым аппликатором. Осторожно покачивают бумажную карту. Агглютинация в течение 2 мин с одним из латекс - диагностических препаратов свидетельствует о присутствии в испытуемом образце специфического антигена. Встречный иммуноэлектрофорез (экспресс-метод)
Реакция позволяет с помощью специфических антисывороток выявлять полисахаридный антиген возбудителя в спинномозговой жидкости или сыворотке крови больного уже в первый день исследования материала. Для проведения реакции необходимы: проба спинномозговой жидкости (осадок, если ликвор мутный) или сыворотка крови, преципитирующие антисыворотки, веронал - мединаловый буфер, 1 %-й агар на веронал - мединаловом буфере, любой аппарат для иммуноэлектрофореза, стеклянные пластины размером 9 и 12 см, трафареты, пробойники для агара, отсасывающие агар устройства, пастеровские пипетки или дозаторы с наконечниками, фильтровальная бумага, предметный столик или другой объект с идеально ровной поверхностью. В аппарат для иммуноэлектрофореза заливают веронал - мединаловый буфер, содержащий в 1 л дистиллированной воды 21,9 г мединала и 3,35 г веронала (веронал предварительно нагревают на водяной бане в небольшом количестве дистиллированной воды до полного растворения). Измеряют рН и доводят его до уровня 8,6. Далее на веронал - мединаловом буфере (предварительно развести дистиллированной водой в 4 раза) готовят 1 % агар. Ход исследования: на 100 мл буфера добавляют 1 г агара, нагревают на водяной бане до полного растворения и в горячем, но несколько охлажденном виде (60 - 70 °С) в количестве 20 мл наносят на стеклянные пластины размером 9 и 12 см. Пластину предварительно помещают на ровную горизонтальную поверхность. После застывания агара специальным пробойником или металлической трубкой с диаметром 3 мм высекают два параллельных ряда отверстий по длине стекла на расстоянии 3 мм друг от друга. Специфические антисыворотки вносят в лунки агара со стороны анода (+), а испытуемую пробу спинномозговой жидкости или сыворотку крови - со стороны катода (-). В отдельные лунки помещают положительный контроль. В качестве положительного контроля используют антигенный препарат (полисахарид) и гомологичную антисыворотку. Подготовленную пластину помещают в аппарат для иммуноэлектрофореза, соединяют стекло и буфер с помощью фильтровальной бумаги и включают аппарат в сеть. Время экспозиции 20 - 30 мин при силе тока 12 ма. Результат учитывают через 10 мин после выключения аппарата. Реакцию считают положительной, если между лунками проявляются четкие линии преципитации, которые хорошо видны в проходящем свете. Рекомендуется проведение повторного и окончательного учета результатов реакции через 24 ч, при этом стекла хранят во влажной камере или в эксикаторе с влажной атмосферой.
Реакция коагглютинации (экспресс-метод) -серологический тест, в котором используются стафилококки (носитель протеина А,по отношению к иммуноглобулинуС). Такой носитель, погруженный специфическими антителами, представляет собой диагностикум, который позволяет эффективно проводить детекцию разнообразных растворимых антигенов, а также антител. Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) Исследование сыворотки больного в реакции непрямой (пассивной) гемагглютинации позволяет существенно увеличить процент лабораторного подтверждения генерализованных форм менингококковой инфекции. Для получения достоверного результата обязательным условием является исследование сывороток крови больного в динамике, т.е. взятых в разные сроки заболевания (на 1-й и 10 - 12-й дни заболевания). Одной из модификаций микрометода является постановка РНГА в полистироловых пластинах с объемом лунок не менее 300 мл с использованием автоматических дозаторов на 0,5 и 1 мл. Необходимые реагенты: диагностикумы эритроцитарные менингококковые полисахаридные серогрупп А и С; исследуемая сыворотка, разведенная 1:5; забуференный физиологический раствор (ЗФР). Ход исследования: два ряда полистироловой пластины (для выявления антител к менингококкам серогрупп А и С) заполняют по 1 мл ЗФР, затем проводят двукратное титрование исследуемой сыворотки с разведения 1:5. В каждый ряд добавляют по 0,5 мл соответствующего диагностикума. Пластину встряхивают и помещают в термостат на 2,0 - 2,5 ч при 37 °С, после чего учитывают результаты. Обязательными контролями служит отсутствие спонтанной агглютинации диагностикума и исследуемой сыворотки. Для этого к 1мл диагностикума добавляют 0, 50 мл ЗФР, а к 1 мл сыворотки -0, 5 мл 1 %-х эритроцитов барана. Учет результатов РНГА проводят по четырехкрестной системе. Четырехкратное и более нарастание титра специфических антител в процессе болезни служит подтверждением диагноза. Экспресс-метод – иммуноиндикация с помощью реакции иммунофлюоресценции со специфической сывороткой типа b (используют при диагностике менингитов).
Оценка ___________ Подпись преподавателя ______________ Приложение № 1
|
||||||||
Последнее изменение этой страницы: 2017-02-07; просмотров: 163; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы! infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 18.118.210.213 (0.019 с.) |