Другие способы регуляции синтеза белка у прокариот

Другие способы регуляции синтеза белка у прокариот

Регуляция на этапе инициации транскрипции

Регуляция на этапе элонгации и терминации транскрипции

Два важнейших способа регуляции транскрипции на стадии элонгации –

индукция субстратом и репрессия продуктом – рассмотрены нами в разделе 1.1.

Кроме этих базовых, имеются и другие механизмы, изменяющие синтез белка

через воздействие на элонгацию транскрипции. Наиболее хорошо изученные

из них рассмотрены ниже.

 

Как вирус заставляет бактерию на него работать

(изменение свойств β-субъединицы РНК-полимеразы)

Прямое воздействие на РНК-полимеразу, приводящее к изменению ее

свойств, используют некоторые бактериофаги (то есть вирусы бактерий), такие

как бактериофаг Т4. Цель такого воздействия – изменить свойства

бактериального фермента таким образом, чтобы переключить его на

транскрипцию своего собственного генома. При этом синтез бактериальных

РНК прекращается. Особый фаговый белок взаимодействует с β-субъединицей

РНК-полимеразы E. coli, в результате чего уже начавший транскрипцию

фермент перестает воспринимать в качестве матрицы для транскрипции

обычную бактериальную ДНК, содержащую цитозин, а воспринимает только

измененную ДНК (фаговую), где вместо цитозина содержится 5-

17гидроксиметилцитозин. В итоге вместо нужных бактериальной клетке мРНК и

белков синтезируются продукты, необходимые вирусу.

В рассмотренном случае на РНК-полимеразу оказывает воздействие не

низкомолекулярный эффектор, а белок, однако, как и под воздействием ффГфф

(см. ниже), регуляция элонгации основана на изменении способности РНК-

полимеразы распознавать определенные особенностиДНК-матрицы.

 

Аттенюация транскрипции

Аттенюация – это регулируемая терминация, которая происходит лишь в

том случае, если строящаяся мРНК приобретает определенную вторичную

структуру. Механизм аттенюации удобно рассмотреть на примере уже

знакомого нам триптофанового оперона. Смысл этого способа регуляции –

остановить синтез ферментов А, В и С, закодированных в trp-опероне, если в

клетке достаточно триптофана (как и в случае репрессии этого оперона,

рассмотренной в разделе I.1). Схема процесса представлена на рис. 11.

На ДНК внутри лидерной последовательности оперона, после оператора,

но приблизительно за 180 пар нуклеотидов до структурных генов белков-

ферментов синтеза триптофана расположен аттенюатор (attenuate – ослаблять,

затухать; см. рис. 3). Зона аттенюатора транслируется в участок на мРНК, в

котором закодирован лидерный пептид из 14 аминокислот, в том числе –

нескольких триптофановых остатков подряд. После своего синтеза этот пептид

очень быстро разрушается.

Перед аттенюатором находятся несколько участков ДНК,

последовательности которых обладают центральной симметрией. Это приводит

к тому, что мРНК, построенная РНК-полимеразой комплементарно к таким

участкам, способна образовать две взаимоисключающие комбинации – либо

две шпильки (из участков, обозначенных на рисунке 1-2 и 3-4) либо только

одну шпильку (из участков 2-3). Если возникнет структура из двух шпилек, то

наличие в ней шпильки 3-4 приведет к терминации транскрипции на

аттенюаторе. В этом случае мРНК для синтеза ферментов А, В и С

синтезироваться не будет. Если сформируется единственная шпилька 2-3, то

РНК-полимераза беспрепятственно минует аттенюатор и проведет

транскрипцию генов, кодирующих ферменты синтеза триптофана (А, В, С) до

конца.

Так как у прокариот трансляция начинается еще до завершения

транскрипции, лидерный пептид строится рибосомой еще до того, как РНК-

пролимераза начнет строить мРНК на цистронах триптофанового оперона.

Двигаясь по участку мРНК, содержащему “пропись” лидерного пептида, Лидерная область РНК

А

Старт «Критическая» область стоп

шпилька 1-2

шпилька 3-4

Б

шпилька 2-3

В

терминация транскрипции

Г

транскрипция структурных генов оперона

Рис. 11 Механизм аттенюации на примере триптофанового оперона

А – функционально важные участки на мРНК, еще не образовавшей шпилек. Лидерная

область РНК кодирует лидерный пептид. В “критической” области закодированы остатки

триптофана;

Б – процесс выбора одной из двух альтернативных шпилечных структур;

В – структура из двух шпилек, в образовании которых участвуют последовательности 1 - 2 и

3 - 4. Наличие терминирующей шпильки 3 - 4 приводит к терминации трансткрипции;

Г – структура из одной шпильки 2 - 3, возникающей при остановке рибосомы на

“критическом” участке лидерной РНК. Отсутствие терминирующей шпильки обеспечивает

беспрепятственное построение мРНК со структурных генов.

рибосома поочередно присоединяет аминокислотные остатки, синтезируя

заданную пептидную цепочку, и доходит до места, где в цепи должны

находиться остатки триптофана. Если в клетке триптофан отсутствует,

рибосома не может вставить его в пептид и останавливается на

соответствующем месте мРНК. Остановившись, она закрывает собой

последовательность 1. Это делает невозможным формирование шпильки 1-2 и

сопутствующей ей второй (терминаторной) шпильки 3-4. В соответствии с этим

терминации транскрипции не происходит, РНК-полимераза переходит в

область структурных генов оперона и строит там мРНК для синтеза ферментов

А, В, С. В итоге отсутствие триптофана “включает” процесс его синтеза

ферментами А, В, С.

Если триптофана в клетке достаточно, то рибосома использует его,

включая в цепь лидерного пептида и движется дальше, не останавливаясь на

критическом участке мРНК. Поэтому препятствий для формирования ансамбля

шпилек 1-2 и 3-4 не возникает. Терминаторная шпилька 3-4 обеспечивает

терминацию транскрипции на аттенюаторе, не доходя до структурных генов. То

есть при достаточном количестве триптофана построения ферментов для его

синтеза не происходит.

Таким образом, в бактериальной клетке уровень транскрипции

регулируется содержанием триптофана. Если триптофан (Trp) в избытке, то

девять из десяти молекул РНК-полимеразы, начавших транскрипцию

триптофанового оперона, прекращают синтез РНК на аттенюаторе. Чем

триптофана меньше, тем больше молекул полимеразы сможет завершить

полный синтез мРНК, а, следовательно, возрастет количество ферментов,

нужных для синтеза этой аминокислоты.

 

Регуляторные белки

Регуляторные элементы ДНК могут оказывать свое влияние на

транскрипцию гена лишь опосредованно, через регуляторные белки.

Регуляторные белки, кодируемые транс-элементами (то есть не на той же самой

молекуле ДНК, что и регулируемый ген), называют транс-действующими

регуляторными факторами. Если белок кодируется цис-элементом, его

называют цис-действующимфактором.

Белки, регулирующие транскрипцию благодаря их собственному

высокоспецифическому взаимодействию с ДНК или стехиометрическому (но

не ферментативному!) взаимодействию с другим ДНК-связывающим белком,

называют транскрипционными факторами (TФ). Гистоны не относят к

транскрипционным факторам, так как они при связывании с ДНК проявляют

низкую специфичность (то есть могут связаться с ДНК практически по всей ее

длине, а не на определенном коротком участке).

Регуляторные белки имеют домены для прикрепления к определенному

регуляторному элементу ДНК и домены для белок-белковых взаимодействий.

Для связывания с ДНК регуляторным белкам служат типичные фрагменты

вторичной структуры – ДНК-связывающие мотивы. Известен целый ряд таких

мотивов: “цинковые пальцы”, “спираль-поворот-спираль”, “лейциновая

молния”, “спираль-петля-спираль” и другие. Два из названных мотивов

представлены на рис. 12. Классификация транскрипционных факторов

представлена в Приложении 4.

В отличие от прокариот, эукариотические регуляторные белки оказывают

свой эффект не по одному, а в сочетаниях (комплексах). В транскрипционном

комплексе (см. [7]) число общих и специфических факторов может доходить

до 50, причем замена или отсутствие хотя бы одного из факторов приводит к

изменению способности РНК-полимеразы инициировать транскрипцию на

данном промоторе. Общие белковые факторы обязательны при сборке

транскрипционного комплекса в районе промотора любого гена и на любой

стадии развития, тогда как набор специфических белковых факторов будет

меняться в зависимости от транскрибируемого гена, типа клеток, фазы

жизненного цикла, средовых условий и т.д. (см. Приложение 4, классификация

белковых факторов в зависимости от их функции).

Транскрипционные факторы, активирующие транскрипцию, называются

позитивными, или активаторами, а подавляющие транскрипцию –

негативными, или репрессорами. И те, и другие могут пребывать в активном инеактивном состоянии. Переход из неактивного состояния в активное у разных

транскрипционных факторов происходит разными способами (рис.13).

А Б

Рис. 12 ПримерыДНК-связывающих мотивов в регуляторных белках

А) "цинковые пальцы" (черные шарики - ионы Zn). Цинковый палец, "finger" (этот домен

можно отрезать от целого белка и выделить отдельно) - самый маленький из известных

глобулярных белков. На представленном фрагменте видны 3 “цинковых пальца”.

Б) "лейциновая молния". Когда лейциновая молния не связана с ДНК, она представляет

собой просто димер из параллельных α-спиралей, “слепившихся” по всей длине своими

гидрофобными поверхностями из боковых радикалов лейцинов (показаны в виде выступов).

Однако одна (на каждой спирали) из этих групп – не гидрофобна: желтым пятном отмечен

вкрапленный в гидрофобную поверхность полярный незаряженный аспарагин. Он

необходим для образования именно димера. Его замена на более гидрофобный остаток

приводит к тому, что спирали “ будут слипаться” не по две, а по три и более.

На каждой полипептидной цепи указан С-конец.

Перейдя в активное состояние, специфические транскрипционные

факторы могут изменять активность основных транскрипционных факторов

(например, TFIIB или TFIID) или конкурировать с ними за сайты связывания на

ДНК. Например, некоторые эукариотические факторы-репрессоры связываются

с ДНК так близко от промотора, что закрывают доступ к нему РНК-

полимеразы. Другие транскрипционные факторы могут конкурировать с

белками обратного действия. Например, репрессор может занять сайт на ДНК,

предназначенный для белков-активаторов (так называемое “гашение” –

quenching). В этом случае активаторы не могут присоединиться к ДНК и

облегчить инициацию транскрипции.

 

Эффекторы

Эффекторы – это белки, сами не способные связываться с ДНК, но

регулирующие функционирование белков, способных к такому связыванию

(общих и специфических факторов). Взаимодействие эффектора срегуляторными белками изменяет их способность влиять на регулируемые

гены. Например, эффектором является ингибиторный белок, после отщепления

которого транскрипционный фактор переходит в активное состояние (рис.13).

Расщепление неактивного предшественника

Синтез (экспрессия)

Фосфорилирование Дефосфорилирование

Вытеснение неактивного Распад комплекса с

партнера активным ингибиторным белком

Связывание с лигандом

Рис. 13 Основные пути активации транскрипционных факторов

Зеленым цветом показано функционально неактивное состояние

транскрипционного фактора, красным – активное.

Белки-эффекторы, присоединение которых заставляет функционировать

активаторы, называются коактиваторами, взаимодействующие с

репрессорами – корепрессорами. Как и сами транскрипционные факторы, и

коактиваторы, и корепрессоры могут переходить из функционально активной

формы в неактивную и обратно.

2.2.4. Медиатор

Медиаторами называют белковые комплексы эукариот,

осуществляющие передачу регулирующего сигнала с белка-активатора (или

репрессора), связавшегося с регуляторным элементом (энхансером,

сайленсером), на общие факторы транскрипции в транскрипционном комплексе

РНК-полимеразы II. Важно, что медиатор способен собирать и интегрировать

регуляторные сигналы от многих активаторов и репрессоров (а, следовательно,

от многих регуляторных элементов ДНК) и активно влиять на РНК-полимеразу

II уже на основе этого интегрированного сигнала. Медиатор,

29взаимодействующий с регуляторными белками и РНК-полимеразой II,

изображен на рис. 14.

Активатор Е1А

«нога»

MED

Cdk8 16/23/24

«тело»

CTD

MED25

VP16 «голова»

Pol II

Рис. 14 Медиаторный комплекс

Более чем 20 белков, входящих в медиатор (обозначены розовым цветом), делятся на модули

“головы” (head), “тела” (body) и “ноги” (leg). До сих пор обсуждается выделение четвертого

модуля (на рисунке обозначен красным цветом), в состав которого входит пара из циклина и

фермента – циклин-зависимой киназы cdk8 (о циклинах см. Приложение 8). Эта пара

действует на C-концевой домен главной субъединицы РНК-полимеразы (обозначен как CTD)

и при определенных условиях инактивирует его до инициации транскрипции.

Модуль “головы” прямо взаимодействует с РНК-полимеразой II и влияет на ее активность.

Модуль “тела” соединяет части медиатора и С-концевой домен РНК-полимеразы II Модуль

“ноги” содержит белки, взаимодействующие с белками - активаторами или ингибиторами

транскрипции.

Белки медиатора способны изменять свою активность под действием различных химических

сигналов. В качестве примера на рисунке представлены воздействия на медиатор белка

простого герпеса VP16 (влияет на компоненты “головы” медиатора) и аденовирусный белок

E1A (изменяет функционирование белков четвертого модуля). Воздействия белков этих

вирусов изменяют активность РНК-полимеразы, что приводит к изменению синтеза белков,

кодируемых транскрибируемым геном.

 

Другие способы регуляции синтеза белка у прокариот